close

Вход

Забыли?

вход по аккаунту

?

2285.Балантидиоз свиней (совершенствование методов лечения и профилактика)

код для вставкиСкачать
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
ФГБОУ ВПО СТАВРОПОЛЬСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ
БАЛАНТИДИОЗ СВИНЕЙ
(совершенствование методов
лечения и профилактики)
Монография
Ставрополь
«АГРУС»
2013
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
УДК 591.619
ББК 48.7
Б20
Рецензенты:
доктор ветеринарных наук, профессор В. И. Колесников;
доктор ветеринарных наук, доцент А. Н. Кононов
Балантидиоз свиней (совершенствование методов лечения
Б20 и профилактики) : монография / С. Н. Луцук, Ю. В. Дьяченко,
О. А. Гевлич, Ю. С. Силин. – Ставрополь : АГРУС Ставропольского гос. аграрного ун-та, 2013. – 128 с.
ISBN 978-5-9596-0872-9
В основу монографии положены результаты научных исследований,
проведенных на свинопоголовье в Ставропольском крае. В издании описана морфология, биология развития балантидий, рассмотрен вопрос
специфичности возбудителя балантидиоза животных, приведены сведения о распространении заболевания на территории Российской Федерации в целом и в Ставропольском крае в частности, а также сведения о
клиническом проявлении балантидиоза свиней, патологоанатомических
изменениях при данной патологии и традиционные средства и методы
лечения свиней при балантидиозе. Подробно изложены результаты испытания биологически активных препаратов на основе побочных продуктов
пчеловодства при лечении и профилактике балантидиоза свиней.
Для практикующих ветеринарных специалистов, студентов факультетов ветеринарной медицины, аспирантов и научных работников.
УДК 591.619
ББК 48.7
ISBN 978-5-9596-0872-9
2
© ФГБОУ ВПО Ставропольский
государственный аграрный университет, 2013
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5
1. Исторические данные о балантидиозе свиней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5
2. Морфология и биология возбудителя балантидиоза . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6
3. Распространение балантидиоза свиней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14
3.1. Анализ эпизоотической ситуации по балантидиозу
в Ставропольском крае. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17
3.2. Эпизоотическая ситуация по балантидиозу свиней
в Петровском районе Ставропольского края . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26
4. Патогенное воздействие балантидий на организм свиней . . . . . . . . . . . . 30
5. Клинические признаки при балантидиозе свиней. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33
6. Патологоанатомические изменения при балантидиозе свиней . . . . . . . 37
7. Диагностика балантидиоза свиней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40
8. Лечение и профилактика при балантидиозе свиней. . . . . . . . . . . . . . . . . . 42
9. Разработка и изучение эффективности новых способов лечения
и профилактики при балантидиозе свиней. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 48
9.1. Испытание эффективности биологически
активного лиофилизированного препарата
из преимагинальных фаз трутней при балантидиозе свиней . . . . . 49
9.2. Разработка и оценка эффективности порошков
из личинок трутней для лечения свиней
с ассоциативным течением балантидиоза . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
9.2.1. Разработка способа получения порошка
из личинок трутней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
9.2.2. Биохимический состав порошка из личинок трутней . . . . . 61
9.2.3. Разработка препарата на основе порошка
из личинок трутней для лечения свиней
с ассоциативным течением балантидиоза . . . . . . . . . . . . . . . 66
9.2.4 Микробиологические исследования
биологического материала из личинок трутней
и порошка из него . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 67
9.2.5. Оценка общей токсичности порошка
из личинок трутней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 73
9.2.6. Испытание порошка из личинок трутней
на лабораторных крысах. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 74
3
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
9.2.7.
9.2.8.
Испытания препарата на основе порошка
из личинок трутней и антибиотиков для лечения
свиней с ассоциативным течением балантидиоза
и пастереллеза на лабораторных крысах . . . . . . . . . . . . . . . . 76
Изучение эффективности препарата из личинок
трутней и антибиотиков при балантидиозе свиней
в ассоциации с пастереллезом . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 77
9.3. Технология производства кормовой добавки
из побочных продуктов: личинок трутней и подмора пчел . . . . . . . 79
9.3.1.
Способы получения и сохранения
физических свойств личинок трутней
и подмора пчёл в условиях пасеки . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80
9.3.2. Разработка состава кормовой добавки . . . . . . . . . . . . . . . . . . 81
9.3.3. Разработка состава и способов приготовления
кормовой добавки из личинок трутней
и подмора пчел . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 83
9.3.4. Микробиологические и токсикологические
исследования кормовой добавки
из личинок трутней и подмора пчёл . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 85
9.3.5. Оценка общей токсичности
и безвредности кормовой добавки . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 87
9.3.6. Химический состав кормовой добавки . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 89
9.3.7. Испытание кормовой добавки
на лабораторных крысах . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 93
9.3.8. Испытание кормовой добавки
из побочных продуктов пчеловодства
при профилактике балантидиоза свиней . . . . . . . . . . . . . . . . . 98
9.3.9. Изучение влияния добавки «БиоХит»
на изменение живой массы поросят
при профилактике балантидиоза. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 100
9.3.10. Гематологические показатели поросят
при скармливании кормовой добавки . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 101
9.3.11. Биохимические и иммунологические показатели
крови поросят при скармливании кормовой
добавки из личинок трутней и подмора пчёл . . . . . . . . . . . . 103
9.3.12. Экономическая эффективность использования
кормовой добавки «БиоХит»
при балантидиозе свиней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 110
Практические предложения производству. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 112
Библиографический список. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 113
4
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Введение
Балантидиоз – это протозойное заболевание человека, свиней, телят, овец, кроликов, характеризующееся поражением толстого отдела кишечника, язвенными процессами, диареей, истощением. Балантидиоз животных и человека имеет широкое
распространение в мире и в России. Возникает это заболевание,
как правило, при нарушениях режимов кормления и содержания,
которые приводят к снижению резистентности организма и развитию иммунодефицита (Бочкарев В. Н., 1993, Гончаров С. К., 1993).
Балантидиоз свиней социально опасен (Манжос А. Ф., 1982, 1983,
1984, Сафидулин Р. Т., 2002) и наносит ощутимый экономический
ущерб свиноводческим хозяйствам за счет падежа, отставания в
росте переболевших животных и затрат на лечение, только в Ставропольском крае экономический ущерб от балантидиоза свиней
ежегодно составляет до 83 млн рублей.
1. ИСТОРИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ
О БАЛАНТИДИОЗЕ СВИНЕЙ
Балантидии широко распространены на нашей планете,
большинство видов обитает в кишечнике амфибий, не вызывая
патологий у хозяина. Однако есть такие балантидии, которые приспособились к обитанию в пищеварительном тракте млекопитающих. Главное место среди этих видов занимает Balantidium coli
(О.А. Корнилова, 2004).
В 1675 г. впервые Левенгук обнаружил свободно живущих инфузорий (Vorti-cella) как новую, до этого не известную науке составную часть живого мира нашей Планеты. В 1765 г. Wrisberg ввел
термин Infusoria. Trembley (1745) описал деление, то есть показал
механизм размножения инфузорий. Gleichen (1778) применил метод кормления инфузорий кармином и описал у них пищеварительные вакуоли. Gruithuisen (1812) отметил протоплазматические
токи в инфузориях. В 1852 г. Perty ввел термин Ciliata, который
стал систематическим названием класса инфузорий. Balantidium
coli (синонимы Paramaecium coli Malmsten, 1857; Plagiotoma coli –
Claparede et Lachmann, 1858; Leucophrus coli – Sten, 1860; Holophrya
coli – Leuckart, 1863) является единственным видом инфузорий,
патогенным для человека (А.А. Авакян, 1975).
5
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Шведский врач П. Малмстен (1857) впервые описал балантидии человека и дал паразиту название Paramaecium coli. Р. Леукарт
(1861), открывший инфузорию в кишечнике свиней, считал, что
она идентична инфузориям, описанным ранее у других животных,
и отнес ее к роду Holophrya. Ф. Штейн (1863) пришел к заключению, что инфузория, описанная Р. Леукартом, по своим морфологическим признакам весьма сходна с Balantidium entozoon, открытым К. Эренбергом (1838) у лягушки. На основании этого автор отнес данного паразита к роду Balantidium и дал ему название
Balantidium coli. После этих открытий считалось, что балантидии
свиньи и человека принадлежат к одному виду, и что свинья – главный резервуар инвазии человека (Аппасов Р. Н., 1980).
Н. С. Соловьев (1901) впервые показал этиологическую роль
Balantidium coli в язвенных колитах человека. Клиника, патологическая анатомия и эпидемиология этого заболевания были изучены
Ф. А. Ржаницыным (1924), А. А. Авакяном (1936, 1937, 1938, 1939,
1975), Е. М. Хейсин и Пик Левонтин (1940,1944), Д. П. Сванидзе
(1947), И. Г. Карпенко (1974) и др.
По данным И. Г. Карпенко (1974), в России балантидиоз у человека описали врачи Ф. А. Леш (1870), И. А. Ранчевский (1880),
Л. А. Лавровская (1890), И. П. Жегалов (1898) и др.
Первые сведения о дизентерии свиней в нашей стране опубликованы ветеринарным врачом М. Белявцевым (1938), который на
основании практических наблюдений дал краткое описание клиники, патологоанатомических и эпизоотологических данных этого
заболевания (Аппасов Р. Н., 1980).
2. МОРФОЛОГИЯ И БИОЛОГИЯ
ВОЗБУДИТЕЛЯ БАЛАНТИДИОЗА
В желудочно-кишечном тракте домашних животных, питающихся преимущественно растительным кормом, встречаются различные инфузории, в том числе ведущие паразитический образ
жизни. К ним относятся балантидии Balantidium coli (рис. 1).
В литературных источниках возбудителем балантидиоза свиней
является Balantidium coli (Г. С. Кузнецов, А. Н. Протасов, 1968;
К. И. Абуладзе, 1975). Однако, начиная с 1953 года, многие авторы
склонны считать, что у всеядных существует свой возбудитель –
6
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Balantidium suis (Орлов Ф. М., 1953; Агринский А. И., 1963; Абуладзе К. И., 1990), хотя П. С. Иванова еще в 1939 году высказывала мнение о существовании у всеядных двух видов Balantidium
coli и Balantidium suis. Это подтверждает то, что балантидии разнятся между собой по антигенной структуре (Якубовский М. В.,
Ятусевич А. И., 1987) и наличием условного количества ДНК на
единицу площади (Balantidium. coli – 283, Balantidium suis. – 179)
(Манжос А. Ф., 1982). О наличии обоих балантидий в кишечнике
свиней свидетельствуют М. С. Donald (1922), В. И. Ридала (1970),
П. С. Иванова (1948).
(ɪ
)
Рисунок 1. Формы балантидии:
1 и 2 – вегетативные формы балантидии; 3 и 4 – циста балантидии
Вопрос о том, что свинья и человек могут быть хозяевами разных видов балантидий, впервые был поставлен McDonald (1922).
Основываясь на проведенных им морфологических исследованиях, выделил два вида балантидий: у свиней Balantidium suis, а
у человека – Balantidium coli, которые различаются между собой
по биометрическим показателям, по форме тела, по форме и величине макронуклеуса, а также положению ротового отверстия.
Мнение McDonald поддержали и другие авторы (Иванова П. С.,
1948; В. Ридала, 1970), которые, однако, несколько видоизменили
его концепцию. Если McDonald не отрицал существования у свиней того же вида балантидий, что и у человека, но признавал лишь
присутствие у них дополнительного вида (Balantidium suis), то по
мнению указанных авторов балантидии человека и свиньи вообще
относятся к двум разным видам (Рочкине А., 1982).
7
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
К. М. Восканян (1970) указывает, что балантидии человека по
своим биометрическим показателям достоверно отличаются от балантидии свиней.
Т. К. Жордания (1969) с целью дифференциации балантидии
человека и балантидии свиньи применила некоторые цитохимические реакции на ДНК, РНК и гликоген. По ее данным, балантидии
человека и свиньи содержат одни и те же вещества, но в разных
количествах.
V. Zaman (1964) сообщает об антигенных различиях между
балантидиями людей и свиней, однако его данные не подтвердились другими исследователями (Dzbenski Т., 1966). В. А. Догель и
В. Гнездилов (1935) указывали, что балантидии человека в отличие от балантидий свиней хорошо растут в культуре. К аналогичному выводу пришла и П. С. Иванова (1940). Однако по данным
В. В. Богданович (1964) и К. М. Восканян (1970), балантидии свиней и человека одинаково хорошо росли на тех же средах.
В большинстве работ были опубликованы данные, противоречащие мнению McDonald. R. W. Hegner (1934) считает, что по морфологическим признакам балантидии человека невозможно отличить
от балантидий свиней. Имеющие место значительные колебания
в размерах особей одного и того же клона Balantidium coli ставят
под сомнение саму возможность использования биометрических
показателей для систематики Balantidium. Е. Schumaker (1930) при
заражении крыс штаммами балантидии типа coli в некоторых случаях наблюдал появление балантидии типа suis. N. D. Levine (1940)
обнаружил, что биометрические, характеристики балантидий зависят от условий существования штаммов. Тип coli наблюдается при
оптимальных условиях роста культуры, тогда, как при голодании
организмы in vito приобретают характеристики suis. Наиболее интересными являются данные, полученные L. Lamy, Н. Roux (1950),
которые из культур балантидий при помощи микроманипулятора
выделили отдельные особи типов coli и suis и получили их самостоятельные культуры.
Балантидии широко распространены в природе. Они выделены от
32 видов животных (обезьяны, свиньи, дикие кабаны, овцы, лошади,
крупный рогатый скот, морские свинки, птицы, рыбы, черепахи, лягушки, тараканы и др.), а также от человека (Авакян А. А., 1975).
Brooks (1903) при вспышке дизентерии среди обезьян (орангутанги) в Нью-Йоркском зоологическом саду впервые обнаружил
8
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
балантидии у этих животных. Christeller (1922) и Zieman (1925) наблюдали в Берлинском зоологическом саду балантидии у больных
дизентерией шимпанзе. Brumpt (1910) и многие другие исследователи обнаружили у обезьян балантидии. (А.А. Авакян, 1975).
По данным А. А. Авакяна (1975), Noller (1926) впервые отметил
носительство инфузорий крысами. У крысы, пойманной в Берлине около свинарника, он обнаружил балантидии. Andrews и White
(1936) нашли балантидии у серых крыс в Балтиморе. Nagahana
(1932) сообщил, что у дикой крысы, пойманной также около свиных стойл, выявлены балантидии, морфологически неотличимые
от человеческих балантидии.
Балантидий у крыс находили в толстых кишках, слепой кишке
и в нижних отделах тонких кишок. Макроскопических изменений
в кишечнике крыс не обнаружено, но при гистологическом исследовании были найдены балантидии.
Сообщение В. В. Богдановича (1969) об идентичности балантидии человека, свиньи и крысы представляет интерес во многих
аспектах. До его сообщения балантидиоз у крыс рассматривали
как ограниченную очаговую инфекцию. В. В. Богданович обнаружил, в районе Днепропетровска до 9 % диких крыс зараженных
балантидиями. Он приводит данные морфологических исследований, которые указывают на идентичность балантидии, паразитирующих в организме человека, свиньи и крысы. Балантидии
свиньи морфологически сходны с балантидиями человека, поэтому им приписывается большое эпидемиологическое значение,
хотя морфологическое сходство еще не говорит о полной тождественности паразита.
В 1861 г. Leuckart впервые сообщил, что домашние свиньи являются носителями балантидии. Brumpt (1936) в Париже обнаружил этих инфузорий у одной из пяти обследованных свиней. Pritze
(1928) обследовал 400 свиней, из которых 66,25 % оказались зараженными балантидиями. Другие исследователи подтвердили эти
первоначальные данные. До последнего времени паразитологи находят, что балантидиоз у свиней протекает в форме носительства и
паразиты не проникают в толщу слизистой оболочки. Балантидии
в кишечнике свиньи инцистируются, тогда как у человека вызывают заболевание, не инцистируясь (Авакян А. А., 1975).
По данным ряда авторов И. Г. Карпенко (1974), Р. Н. Аппасов
(1980), А. А. Авакян (1875) и др., длина балантидии от 40 до 120
9
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
мкм и более, ширина – от 40 до 85 мкм. Балантидии – самые крупные простейшие кишечника свиней. Они обладают активной подвижностью и хорошо различимы под микроскопом. Эти паразиты
бывают яйцевидной, удлиненно-овальной формы. На переднем
конце тела расположено углубление – рот (цитостом), переходящий в воронкообразную трубку, клеточную глотку (цитофаринкс).
Из него пищевые частицы поступают в эндоплазму, где вокруг них
образуются вакуоли (полости), в которых и происходит переваривание пищи. Вблизи заднего конца тела, находится небольшая выемка, или щель, – анальная пора (цитопиг), через которую выбрасываются не переваренные частицы пищи. В эндоплазме паразита
имеется крупное, богатое хроматином большое ядро – макронуклеус, малое ядро – микронуклеус, а также сократительные вакуоли (Аппасов Р. Н., 1980).
Поверхность тела балантидии покрыта оболочкой (пелликула),
благодаря которой паразит сохраняет форму. Пелликула снабжена
многочисленными отверстиями. По ходу ее бороздок расположены
ряды базальных телец, от которых начинаются реснички длиной
около 4–6 мкм (МcDonald,1922), выходящие через отверстие. С помощью многочисленных длинных ресничек паразит быстро передвигается в жидкой среде (рис. 2, 3). Особенно они густо расположены в окружности цитостома. Своими движениями они загоняют
пищевые частицы в ротовое углубление.
Рисунок 2. Bal. coli. Объемное изображение.
Поверхность бугристая, на отдельных участках выявлены
реснички х 10000 (Авакян А. А., 1975)
10
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Цитоплазма
балантидии делится на эктоплазму
(в виде узкой зоны) и на
крупнозернистую
эндоплазму. Цисты балантидии
размером от 65 до 75 мкм
(встречаются
экземпляры величиной от 50 до 90
мкм) овальной или шаровидной формы можно обнаружить в каловых массах
свиней. Форма и величина
цисты балантидии менее
изменчивы по сравнению
с подвижными стадиями.
Цисты лишены ресничного
покрова, имеют двухслойную оболочку. В эндоплазме имеются макронуклеус
и сократительные вакуоли
Рисунок 3. Колония Bal. coli
(Аппасов Р. Н., 1980).
Н. С. Соловьев (1901) и в объёмном изображении, полученном
в сканирующем микроскопе х 900
многие другие авторы вы(Авакян А. А., 1975)
сказали сомнение, что эти
вакуоли способны сокращаться. V. Zaman (1970) для решения этого вопроса применил микрокиносьемку с использованием фазовоконтрастного микроскопа. Процесс сокращения имеет следующую последовательность:
вакуоль постепенно наполняется и по мере увеличения принимает
сферическую форму, затем внезапно сокращается, выбрасывает
содержимое, уменьшается и приобретает неопределенную форму.
Весь процесс длится 20–25 секунд. Каждая сократительная вакуоль функционирует независимо. Эндоплазматический ретикулум
у балантидии слабо развит.
По данным А. А. Авакяна (1975), кроме гранул размером 15 и
20 нм, в цитоплазме балантидии цитохимическими методами обнаружены крупные зерна и глыбки гликогена. Ядерный аппарат
устроен сложно и расположен в середине тела. Макронуклеус имеет бобовидную, нередко палочковидную или подковообразно изогнутую форму, размер 17x8 мкм.
11
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Балантидии в организме хозяина размножаются бесполым и
половым путем. В первом случае размножение осуществляется
прямым поперечным делением вегетативных форм, а также путем почкования. Периодически бесполое размножение паразита
сменяется циклом полового размножения, происходящего по типу
конъюгации, временного слияния двух особей. Они соединяются
цитостомами, и между ними образуется цитоплазматический мостик, макронуклеусы их рассасываются в протоплазме. Микронуклеусы делятся дважды, в результате образуется четыре дочерних
ядра. Из них три гибнут, а четвертое делится на два. Из каждого
конъюганта в соседний мигрирует одно из двух ядер, где происходит его слияние с оставшимся на месте новым ядром. После обмена ядрами особи расходятся и в них снова образуются макро- и
микронуклеус.
Процесс цистообразования балантидии происходит следующим образом. Балантидии, постепенно округляясь, инцистируются, затем мелкозернистая масса эндоплазмы цисты, сгущаясь, образует гомогенный амебоподобный организм, который,
постоянно двигаясь внутри оболочки, принимает форму вегетативной формы балантидии. Далее наступает эксцистирование.
Балантидии свиней в культуре не только размножаются путем
поперечного деления, но также инцистируются, экцистируются
и конъюгируют.
В результате длительных наблюдений над ростом и размножением балантидии в культуре Р. Н. Аппасов (1980) установил их различные формы яйцевидную, удлиненно-овальную, грушевидную,
круглую и другие формы (рис. 4). Все фазы развития паразита
непосредственно в кишечнике свиней, по мнению Р. Н. Аппасова
(1980), не могли проследить при помощи одного только микроскопирования фекалий, потому что в таких условиях балантидии не
размножаются. Тем не менее, во время микроскопирования огромного количества нативных препаратов из свежих фекалий были
неоднократно обнаружены размножающиеся балантидии в начале поперечного деления, а также цистовидные особи с одной оболочкой, амебовидное тело внутри цисты и освобождающиеся от
оболочки паразиты. Все это дает основание считать, что процесс
размножения балантидии в кишечнике свиней и у других хозяев
протекает такой же, как и в культуре.
12
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Рисунок 4. Развитие балантидии в культуре:
1) конъюгирующие балантидии: А– размножение путем поперечного
деления; AI – начало процесса поперечного деления: АII – середина
процесса; AIII – последняя стадия процесса; AIV-v – дочерние
балантидии; Б – инцистирование балантидии: БI – балантидии
в стадии инцистирования; БII – циста с двухконтурной оболочкой;
БIII – формирование подвижного организма; BIV – дальнейшее
развитиебалантидии (отсутствуют реснички); БV – образование
вегетативной формы со всеми органоидами; БVI — освобождение
от оболочки цисты; 2) форма балантидии: I – яйцевидная;
II – удлиненно-овальная; III – грушевидная; IV – круглая;
V–XII – прочие формы
13
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Балантидии культивируют на искусственных питательных средах Е. А. Павловой (1958), Рейса (1923), Д. Б. Смиссема (1932),
В. В. Петровского, Р. Н. Аппасова (А, и А2. 1968), на почечной воде
или на лошадиной сыворотке с добавлением антибиотиков. Выращивают балантидии также на среде Щуренковой – Носиной с добавлением 100 тыс. ед. пенициллина на 1 мл среды.
Исследования многих ученых показали, что инфузории лучше
растут на средах Д. Б. Смиссема, Р. Н. Аппасова (А2) и В. В. Петровского при температуре 37 °С и рН=7.
При посеве трех штаммов балантидии (вегетативная форма и
циста), выделенных от домашних и диких свиней и серых крыс, на
питательные среды A1 и А2 Р. Н. Аппасов (1980) наблюдал стадии
конъюгации, размножение путем почкования, а также деление балантидии в цисте на два.
В результате культивирования вегетативной формы балантидии
на питательную среду особи питались крахмальными глыбками
или кристалликами путем заглатывания их через цистосом.
Движения балантидии, выделенных из фекалий свиней, бывают
преимущественно поступательно-плавательного характера, а у паразитов, выделенных из культуры после суточного выращивания,
когда эндоплазма их набита крахмальными кристалликами, чаще
всего наблюдалось движение вперед путем вращения вокруг своей
оси, в виде перекатывания жидкости.
Таким образом, многие ученые занимались изучением морфологии и биологии возбудителя балантидиоза свиней. Было хорошо
изучено строение, развитие, размножение, жизнедеятельность балантидии. Однако общего мнения по видовой специфичности этих
возбудителей нет. Большинство ученых склоняются к тому, что
Balantidium coli является одним возбудителем для всех животных
и человека.
3. РАСПРОСТРАНЕНИЕ
БАЛАНТИДИОЗА СВИНЕЙ
Балантидии распространены практически повсеместно в
природе. Они выделены от 32 видов животных (обезьяны, свиньи,
дикого кабана, овцы, лошади, крупного рогатого скота, морской
свинки, птицы, рыбы, черепахи, лягушки, таракана и др.), а также
от человека (Авакян А. А., 1975).
14
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Балантидиоз свиней зарегистрирован почти во всех зонах Российской Федерации и СНГ, занимающихся свиноводством.
Распространение, течение и смертность при балантидиозе зависят от общего состояния животных, соблюдения гигиенических
норм кормления и содержания, карантинирования завезенных в
хозяйство животных, своевременной диагностики и лечения больных животных.
С постепенным накапливанием знаний о морфологии, развитии
и жизнедеятельности балантидий, были установлены сведения об
их устойчивости к внешним факторам.
По имеющимся данным И. Г. Карпенко (1974), вегетативные
(подвижные) формы балантидий во внешней среде неустойчивы.
Выделенные с фекалиями они погибали через несколько часов, а в
трупах лизировались через 3–5 часов.
Во влажной среде при комнатной температуре цисты сохраняют жизнеспособность до двух месяцев. В сухом материале (в тени)
они живут до двух недель. Под действием солнечных лучей цисты
погибают через три часа.
В желудочном соке цисты сохраняют жизнеспособность 12 часов, в спирте – 30 минут, в моче – 10 дней. Обычные дезинфицирующие растворы – 20 %-ный креолин, карболовая кислота (3 %),
формалин (4 %), хлорная известь (20 %) и мыло К (5 %) – не убивают цист балантидий (Апанасов Р. Н., 1980).
Исследования многих ученых показали, что инфузории лучше
растут на средах Д. Б. Смиссема, Р. Н. Аппасова (А2) и В. В. Петровского при температуре 37°С и рН=7.
О распространении балантидиоза свиней в нашей стране
имеются следующие сведения. П. С. Иванова (1948) исследовала распространение балантидиоза свиней в Ивановской области.
В. И. Плаксин (1968) изучал желудочно-кишечное заболевание
свиней на Южном Урале, возбудителями которого являлись балантидии. Как отметил автор, в неблагополучных по балантидиозу
хозяйствах около 40 % клинически здоровых свиней явились балантидиозоносителями.
В. Ф. Савченко (1969) наблюдал патогенное влияние паразитов
на организм свиней в хозяйствах Белоруссии. Обследовав поросят
в девяти хозяйствах, в пяти из них он обнаружил остро и хронически протекающее заболевание свиней. Инвазированность свинопоголовья балантидиями в неблагополучных хозяйствах составила
от 46,3 до 100 %.
15
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
И. Г. Карпенко (1972) сообщает об обширном распространении
заболевания свиней в хозяйствах Ростовской области. Инвазированность свинопоголовья балантидиями в неблагополучных хозяйствах составляла от 65,1 до 100 %, им нанесен ощутимый экономический ущерб.
Р. Н. Апанасов (1980) наблюдал широкое распространение болезней желудочно-кишечного тракта свиней в хозяйствах Казахстана. Из обследованных им 83 свинотоварных ферм колхозов и
совхозов Казахстана в течение ряда лет оказались зараженными
балантидиями свиней – 30,8 %, а падеж от балантидиозной дизентерии составил от 34,2 до 82,4 %.
А. Ф. Манжос, В. С. Сумцов, Н. М. Лапшин (1982); В. В. Богданович (1964) наблюдали за распространением возбудителя в
16 свиноводческих хозяйствах Украины. Научные исследования
В. В. Богдановича показали следующее: в течение 20-30 дней после отъема переболевало от 30–70 % поросят с признаками поражения органов пищеварения. У 80–90 % этих животных выделялось большое количество трофозоитов балантидий.
П. В. Бонка (1985) впервые обнаружил возбудителя балантидиоза свиней в Средней Азии, в различных природно-климатических
районах Узбекистана. Заболеваемость животных балантидиозом
составила 30 %, летальный исход – 22,1 %.
С. К. Гончаров (1986) установил широкое распространение балантидий в свиноводческих хозяйствах Витебска.
А. Н. Жумакаева (1986) исследовала распространение смешанного течения данного заболевания с кишечными нематодозами
свиней в Казахстане.
В. А. Васильева (1994) сообщает, что балантидиоз – наиболее
часто встречающееся протозойное заболевание, протекающие в
ассоциации с другими кишечными заболеваниями в Мордовской
ССР.
В. К. Чернуха, В. И. Бырка, В. И. Котляр, В. Я. Пономаренко,
П. В. Люлин (1995) отметили широкое распространение балантидиоза свиней в хозяйствах Харьковской области Украины.
В. А. Сидоркин (2002) проводил испытания препарата «Метронид 50» на Северном Кавказе, Нижнем и Среднем Поволжье, Урале, Западной Сибири, в хозяйствах, неблагополучных по балантидиозу, что указывает на распространение его в этих регионах.
Е. В. Бобчук (2003) уведомляет об обнаружении балантидиоза в хозяйствах Амурской области Дальнего Востока. Д. Н. Малов
16
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
(2004) изучал распространение этого заболевания свиней в хозяйствах Краснодарского края. Н.И. Осипова (2005) установила распространение балантидиоза на территории Западной Сибири, где
зараженность свиней составила – 35,8 %.
Следует отметить, что заболевание свиней балантидиозом было
зарегистрировано в ближайшем зарубежье и во многих регионах
нашей страны. Но к началу наших исследований четких сведений
о распространении балантидиоза среди поголовья свиней Ставропольского края не было.
3.1. Анализ эпизоотической ситуации
по балантидиозу в Ставропольском крае
В последние десятилетия изменились условия ведения свиноводства в Ставропольском крае, увеличилось количество свиней
в частном секторе и уменьшилось в общественном, что способствовало изменению эпизоотической ситуации по многим заразным заболеваниям, в том числе и по балантидиозу.
Учитывая отсутствие исследований по распространению балантидиоза свиней в Ставропольском крае за последние десятилетия
и изменившуюся эпизоотическую ситуацию этого заболевания, мы
изучали особенности современного эпизоотического процесса по
балантидиозу свиней в крае. Нами была проанализирована ветеринарная отчетность лабораторий Ставропольского края с 2001 по
2008 гг. Результаты этих исследований представлены в таблице 1.
За период с 2001 по 2008 гг. инфекционная и паразитарная
(учтены только болезни протозойной этиологии) патология свиней
в Ставропольском крае формировалась в основном из шести нозологических единиц (рис. 5).
Значительное место среди них занимают эшерихиоз (20,7 %),
балантидиоз (17,9 %), дизентерия (16,8 %), пастереллез (14,2 %),
классическая чума свиней (12,1 %) и сальмонеллез свиней (9,2 %).
Немаловажное значение принадлежит таким инвазионным заболеваниям как трипонемоз (1,6 %) и эймериоз (1,5 %), совокупная
доля которых составляет 3,1 %. Кроме того, регистрируются и
другие инфекционные заболевания, на общую долю которых приходится 5,7 %, в том числе листериоз (2,6 %), африканская чума
(2,1 %), лептоспироз (1,0 %).
17
18
Гол.
%
12
7
0,9
0,5
12
19
2,4 125
13
1,2
2,0
%
Гол.
%
2007
Гол.
%
2008
Гол.
%
Всего
10
8
1,6 126 1,6
2,4 118 1,5
–
626 100 842 100 673 100 1293 100 963 100 723 100 2321 100 496 100 7937 100
Итого
–
8
–
0,9
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
61
–
–
–
4,7
–
–
–
1
–
–
–
0,1
5
–
–
10
0,7
–
–
1,4
2,0
0,4
1,2
6
–
0,3
–
988 42,6
10
29
–
–
1,0
167 2,1
988 12,4
1,2 206 2,6
5,4 1128 14,2
62 12,5 81
–
–
6
27
0,6 1331 16,8
Лептоспироз
–
–
8,0
3
–
–
54
2,9 902 38,9
Афр. чума
–
1,2
21
–
10
4,0
Клас. чума
8,6
9,4 245 19,0 38
54
63
109 17,4 214 25,4 132 19,6 110 8,5 492 51,0 15
1,8
Листериоз
15
3,8 1640 20,7
Пастереллез
7,0
19
91 18,4 734 9,2
8
12
44
2,8
1,2
0,6
0,2
Дизентерия
29
13
4
153 24,4 197 23,4 130 19,3 773 59,8 172 17,9 131 18,1 65
7,9
1,4
1,1
466 64,5 275 11,8 101 20,4 1418 17,9
Гол.
4,2 104 10,8 57
Инфекционные заболевания
2,4
3,3
114 16,9 54
16
22
Гол.
2006
Эшерихиоз
22
Сальмонеллез 100 16,0 185
3,0
3,8
25
32
3,7
3,4
%
2005
Инвазионные заболевания
%
23
Гол.
Трипонемоз
%
2004
21
Гол.
2003
122 19,5 156 18,5 142 21,1 31
%
2002
Эймериоз
Гол.
2001
Балантидиоз
Заболевание
Количество заболевших животных
Таблица 1
Заболеваемость свиней в Ставропольском крае инвазионными и инфекционными болезнями
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
ɷɲɟɪɢɯɢɨɡ
ɩɚɫɬɟɪɟɥɥɟɡ
ɛɚɥɚɧɬɢɞɢɨɡ
ɞɢɡɟɧɬɟɪɢɹ
ɤɥɚɫɫ. ɑɭɦɚ
ɫɚɥɶɦɨɧɟɥɥɟɡ
ɞɪ. ɢɧɮɟɤɰɢɨɧɧɵɟ ɡɚɛɥɟɜɚɧɢɹ
ɞɪ. ɢɧɜɚɡɢɨɧɧɵɟ ɡɚɛɨɥɟɜɚɧɢɹ
Рисунок 5. Нозологический профиль инвазионной
и инфекционной патологии свиней в Ставропольском крае
Результаты анализа показали, что в Ставропольском крае в
2001–2008 гг. балантидиоз свиней занимал 17,9 % среди рассмотренных желудочно-кишечных заболеваний свиней.
Динамика удельного веса балантидиоза в рассмотренной паразитарной и инфекционной патологии свиней представлена на рис. 6.
70
60
50
40
̨̨̣̖̖̥̭̯̌̍̏̌̽̚
̨̨̛̛̣̦̯̥̍̌̌̔̚
30
20
10
0
2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008
Рисунок 6. Динамика удельного веса балантидиоза
в Ставропольском крае
19
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
За последние восемь лет удельный вес балантидиоза колебался
от 2,4 % до 64,5 %, в среднем составляет 17,9 %, это свидетельствует о значимости балантидиоза в кишечной патологии свиней.
Динамика развития балантидиоза свиней в Ставропольском
крае как самостоятельной нозологической единицы, приведена
на рис. 7. На протяжении восьми лет максимальные вспышки балантидиоза были в 2006 году – 32,9 % и 2007 году – 19,4 % заболевших, минимальное количество заболевших приходилось на
2004 год – 2,2 % больных животных, но стабильно проявлялся во
все годы.
35
30
25
20
15
10
5
0
2001
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
Рисунок 7. Динамика заболевания балантидиозом
в Ставропольском крае
Заболеваемость свиней патологиями инфекционной этиологии
значительным образом отразилась на поголовье свиней и количестве хозяйств в Ставропольском крае (табл. 2, 3). Резкое сокращение поголовья наблюдается после 2008 года в связи с заносом африканской чумы (АЧС) на территорию Ставропольского края.
АЧС впервые была зарегистрирована в Российской Федерации
в 2007 году. В настоящее время органы Россельхознадзора характеризуют ситуацию по африканской чуме свиней как «прогрессивно ухудшающуюся». Установлено, что динамика эпизоотического
процесса при АЧС носит волнообразный характер. Первая волна
2007–2010 гг. характеризовалась относительно малой скоростью
20
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
распространения вируса, вторая получила наибольшее развитие
в 4 квартале 2010, а максимальное распространение АЧС зарегистрировано в 2011 году, что, естественно негативно сказалось на
поголовье свиней.
Таблица 2
Численность свиней по категориям хозяйств
в Ставропольском крае (на начало года, тыс. гол.)
Категории хозяйств
Годы
Все
категории
Сельскохозяйственные
предприятия
Хозяйства населения
Фермерские
хозяйства
2001
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
2009
2010
2011
427,5
453,4
547,8
533,2
414,7
478,6
554,8
532,4
455,5
170,6
194,9
243,5
230,2
175,4
226,1
280,5
252,8
221,7
240,6
241,9
284,9
285,0
221,4
233,7
250,6
249,7
212,7
16,3
16,6
19,4
18,0
17,9
18,8
23,8
29,9
21,2
254,0
131,0
111,8
11,2
Таблица 3
Поголовье свиней в хозяйствах Ставропольского края
Наименование п/п районов
1. Александровский
2. Андроповский
3. Апанасенковский
4. Арзгирский
5. Благодарненский
6. Буденовский
7. Георгиевский
Кол-во
хозяйств
9
2
8
8
8
16
11
Свиней всего,
тыс. голов
Падеж свиней,
гол.
2008 г.
2009 г.
2008 г.
2009 г.
3587
318
2646
1561
11656
6148
8190
1138
289
2358
1015
12381
5469
4070
118
0
63
47
277
9
6
6
0
31
13
236
12
9
21
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Продолжение
Наименование п/п районов
8. Грачевский
9. Изобильненский
10. Ипатовский
11. Кировский
12. Кочубеевский
13. Красногвардейский
14. Курский
15. Левокумский
16. Минераловодский
17. Нефтекумский
18. Новоалександровский
19. Новоселицкий
20. Петровский
21. Предгорный
22. 1 Советский
23. Степновский
24. Труновский
25. Туркменский
26. Шпаковский
Итого:
Кол-во
хозяйств
5
8
7
7
8
8
7
6
6
6
9
9
9
10
9
9
5
7
10
Свиней всего,
тыс. голов
2008 г.
Падеж свиней,
гол.
2009 г.
2008 г.
2009 г.
946
554
5515
6112
772
736
10189
5895
14662 14467
48195 59445
7833
1879
2232
449
1136
1155
845
430
20026 15096
30519 30631
13708 11997
3566
2012
16142 11896
1925
1882
18430 22063
3430
2686
1921
379
236924 215077
3
32
21
77
146
1132
202
30
18
14
624
525
567
66
242
93
352
37
19
4734
4
9
3
9
77
1589
250
42
0
287
516
41
20
137
16
309
9
0
3633
В настоящее время практически во всех категориях хозяйств
регистрируют балантидиоз свиней. Однако большее количество
приходится на сельскохозяйственные предприятия и фермерские
хозяйства. Исследования в подсобных частных хозяйствах практически не проводятся. На заболеваемость также значительно влияют и условия содержания животных. Животные на сельскохозяйственных предприятиях находятся в худших условиях: зачастую
антисанитарные условия, высокая плотность размещения свиней,
обедненный рацион.
22
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
По результатам исследований, за последние восемь лет из 26
районов Ставропольского края в восьми встречается балантидиоз
свиней (табл. 4).
Таблица 4
Результаты копрологических исследований на балантидиоз
в районах Ставропольского края за 2008 год
Неблагополучный район
Петровский
Апанасенковский
Георгиевский
Александровский
Буденовский
Благодарненский
Новоселицкий
Советский
Итого
Результаты исследований
всего заболевших
% заболевших
36
27
13
11
5
4
3
2
101
35,6
26,7
12,9
10,8
5,0
4,0
3,0
2,0
100
Наибольшее количество больных балантидиозом свиней наблюдалось в хозяйствах Петровского (35,6%) и Апанасенковского
(26,7%) районов. Меньшее число заболевших животных встречается в Георгиевском (12,9%), Александровском (10,8%), Буденовском (5,0%), Благодарненском (4,0%), Новоселицком (3,0%) и Советском (2,0%) районах.
К сожалению, многие ветеринарные специалисты в свиноводческих хозяйствах не уделяют должного внимания балантидиозу
свиней, не проводят клинический осмотр животных. Хотя, как
показывают наши исследования и наблюдения многих ученых,
изучающих балантидиоз, при расстройствах функции желудочнокишечного тракта чаще других встречается возбудитель балантидиоза как самостоятельная нозологическая единица или на фоне
других заболеваний.
В процессе наших исследований были отмечены случаи ассоциативного течения балантидиоза с другими инвазионными заболеваниями. При исследовании фекалий откормочного поголовья
свиней были обнаружены цисты балантидий и яйца аскарид. При
этом было отмечено, что при смешанном течении балантидиоза и
23
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
аскаридоза происходят более глубокие изменения в показателях
клеточного и гуморального иммунного ответа по сравнению с моноинвазией.
Нами были изучены некоторые аспекты проявления эпизоотического процесса при балантидиозе свиней на примере свинотоварной фермы ООО «Агро-Смета». В результате исследований
было выявлено, что заболеваемость животных балантидиозом составила 33,3 %, смертность – 6,3 %, а летальность – 19 %.
Выясняя причины заболевания поросят балантидиозом на свиноводческой ферме ООО «Агро-Смета», неблагополучной по балантидиозу, мы обследовали его хозяйственные постройки и территории.
Было отмечено, что поросята в возрасте 1–60 дней содержатся
в теплых помещениях, на чистой подстилке из соломы, а поросята
на откорме – на «голых» бетонных полах, с грязными кормушками и ограждениями. Поэтому наибольшая интенсивность инвазии
была отмечена у животных на откорме.
При осмотре соскобов с кормушек, стенок клеток, инвентаря
были обнаружены жизнеспособные цисты балантидий (от 2 до 16
цист в поле зрения микроскопа), а при исследовании смывов вымени подсосных свиноматок были также обнаружены цисты балантидий (от 4 до 8 цист в поле зрения микроскопа).
Кроме того, в хозяйстве нами были обнаружены главные переносчики заболевания – серые крысы, у которых в фекалиях были
обнаружены цисты и вегетативные формы балантидий.
Одним из показателей проявления эпизоотического процесса
является сезонность заболеваемости (табл. 5).
Таблица 5
Сезонность балантидиоза свиней на СТФ «Агро-Смета»
Месяц
Январь
Февраль
Март
Апрель
Май
Июнь
24
Количество заболевших животных, %
22
6
9
14
5
1
Месяц
Июль
Август
Сентябрь
Октябрь
Ноябрь
Декабрь
Количество заболевших животных, %
3
3
4
15
10
8
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
В течение года количество заболевших балантидиозом варьирует, наибольшая зараженность и заболеваемость свиней балантидиозом приходится на осенне-зимний и зимне-весенний периоды,
а наименьшая – на летний период. Так, в исследуемом нами хозяйстве наибольшая интенсивность инвазии приходилась в январе –
22 %, март-апрель – 9–14 %, октябрь-декабрь – 8–15 %.
Нами было отмечено, что инвазия в свиноводческом хозяйстве
чаще проявлялась в осенне-зимний и зимне-весенний период, но
заболевание носило стационарный характер.
Таким образом, балантидиоз свиней чаще проявляется в осеннезимний и зимне-осенний периоды, а в стационарно неблагополучных хозяйствах Ставропольского края - круглогодично.
Результаты наших исследований по изучению возрастных
аспектов при балантидиозе свиней в Ставропольском крае показали, что наиболее восприимчивы поросята-отъемыши в возрасте
двух месяцев: количество инвазированных животных составило
26 % от всего поголовья; больных животных трехмесячного возраста – 21 %, а 4–6 месяцев – 10–14 %. Заболеваемость свиней в
возрасте одного года составила 7 %, а взрослых животных – до 4 %
(табл. 6).
Таблица 6
Возрастная заболеваемость свиней балантидиозом
в Ставропольском крае
Показатель
Возраст, мес: 1
2
3
4
5
6
12
старше 12
Количество заболевших животных, %
5
26
21
14
13
10
7
4
Таким образом, в Ставропольском крае поросята преимущественно болеют балантидиозом в отъемный период или вскоре
после него, а также в возрасте 4–6 месяцев, когда формируются
откормочные группы.
25
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
3.2. Эпизоотическая ситуация по балантидиозу свиней
в Петровском районе Ставропольского края
Как было отмечено выше, в Ставропольском крае одним из
наиболее неблагополучных по балантидиозу свиней является Петровский район. В связи с этим мы провели анализ эпизоотической
ситуации по балантидиозу в отдельно взятом районе.
С 2005 по 2011 гг. в Петровском районе Ставропольского края
изменилось соотношение свиней в частном и общественном секторах: уменьшилось в общественном секторе с 39,9 % до 23,2 %
и увеличилось в частном с 60,1 % до 76,8 %. В 2010 году резко
сократилось поголовье, как в общественном, так и в частном секторах (табл. 7). Это произошло из-за мероприятий, проводимых в
связи с возникновением африканской чумы свиней в Ставропольском крае.
Изменения в ведении свиноводства привели к изменению эпизоотической ситуации по заразным заболеваниям свиней. При изучении особенностей эпизоотического процесса при заразных заболеваниях свиней в Петровском районе Ставропольского края было
установлено, что в популяции свинопоголовья регистрировали 16
болезней (рис. 8).
Рисунок 8. Нозологический профиль инвазионной и инфекционной
патологии свиней в Петровском районе Ставропольского края
26
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
В том числе: пастереллез – 0,99 %, сальмонеллез – 0,42 %,
стрептококкоз – 1,15 %, рожа – 0,02 %, дизентерия – 2,17 %, отечная
болезнь – 0,05 %, колибактериоз – 2,91 %, псевдомоноз – 0,36 %,
стафилококоз – 1,36 %, балантидиоз – 5,4 %, эймериоз – 0,34 %,
аскаридоз – 71,88 %, трихоцефалез – 1,7 %, эхинококкоз – 9,18 %,
саркоптоз – 0,15 % и метастронгилез – 1,83 %.
Анализ полученных данных по паразитарным заболеваниям показал, что чаще всего у свиней встречаются гельминтозы (табл. 8),
они составляют – 93,48 %, затем протозоозы – 6,35 % и реже
арахно-энтомозы – 0,17 %. Кроме того было отмечено, что среди
протозоозов, к которым относится балантидиоз, последний встречается намного чаще – в 94,06 %, чем эймериоз –5,94 % (табл. 9).
Балантидиоз у свиней стабильно регистрировался во все годы
(рис. 9), но количество заболевших за исследуемый период колебалось: в 2006 г. – 95 случаев и в 2008 г. – 11 случаев.
Рисунок 9. Динамика регистрации случаев заболевания свиней
балантидиозом
Смертность при балантидиозе свиней так же колебалась: в 2006
году – 0,38 % и в 2008 году – 0,03 % (табл. 10).
При выявлении причины заболевания поросят балантидиозом
на свинофермах, неблагополучных по балантидиозу, было отмечено, что это заболевание чаще всего протекает совместно с пастереллезом и сальмонеллезом. Сравнивая количество заболевших
животных балантидиозом, пастереллезом и сальмонеллезом выявили прямую корреляционную зависимость между этими заболеваниями (рис. 10).
27
28
%
Кол-во
%
Кол-во
2008
%
Кол-во
2009
%
5322
9322
Кол-во
%
36,4
63,6
2010
661
5
55
721
Арахно-энтомозы
Протозоозы
Итого
голов
%
100
7,63
0,69
91,68
2005
Гельминтозы
Группы паразитов
770
101
–
669
голов
%
100
13,12
0
86,88
2006
1079
34
1
1044
голов
%
100
3,15
0,09
96,76
2007
455
11
–
444
голов
%
100
2,42
0
97,58
2008
423
18
–
405
голов
%
100
4,25
0
95,75
2009
Количество случаев заболеваний свиней паразитозами в 2005–2009 годах
39,9 11994 48,3 15732 56,8 15031 49,7 12323 39,5
7899
Кол-во
2007
Общественный
%
2006
11923 60,1 12862 51,7 11968 43,2 15241 50,3 18878 60,5
Кол-во
2005
Частный
Сектор
Поголовье свиней в Петровском районе Ставропольского края по секторам
23,2
76,8
%
%
3448
219
6
100
6,35
0,17
3223 93,48
голов
всего
Таблица 8
3398
7979
Кол-во
Январь 2011
Таблица 7
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
7
55
Эймериоз
Итого
пало
48
всего
Всего 19822
2005
48
%
всего
100
5,94
34
–
34
голов
2007
100
–
100
%
11
–
11
голов
2008
100
–
100
%
95
пало
2006
всего
0,38 27700
%
34
пало
2007
всего
0,12 30272
%
Смертность свиней при балантидиозе
101
6
95
%
94,06
2006
голов
0,24 24856
%
100
12,73
87,27
2005
голов
Балантидиоз
Заболевание
11
пало
2008
18
–
18
голов
100
5,94
18
пало
2009
0,04
%
Таблица 10
219
13
206
%
94,06
всего
голов
всего
100
–
100
%
0,03 31201
%
2009
Таблица 9
Количество выявленных случаев заболевания свиней протозоозами в 2005–2009 годах
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
29
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Рисунок 10. Динамика заболевания свиней балантидиозом,
пастереллезом и сальмонеллезом
Таким образом, балантидиоз имеет распространение среди свиней Петровского района и встречается из года в год, обычно вместе
с пастереллезом и сальмонеллезом – чаще в частном секторе.
4. ПАТОГЕННОЕ ВОЗДЕЙСТВИЕ
БАЛАНТИДИЙ НА ОРГАНИЗМ СВИНЕЙ
Возбудитель болезни Balantidium coli – факультативно патогенный, энтеротропный паразит. Выделяет токсичные продукты
жизнедеятельности. Это самый крупный паразит из патогенных
кишечных простейших. Он способен длительное время существовать в кишечнике животных, не проявляя своего патогенного действия на их ткани.
Заражение балантидиозом в естественных условиях происходит в результате проникновения цист балантидий в желудочнокишечный тракт свиней вместе с кормом и водой. Эксцистируются
они в просвете слепой и ободочной кишок. При нормальном состоянии слизистой оболочки кишок инфузории длительное время
находятся в полости толстых кишок как типичные комменсалы.
Они питаются бактериями, зернами крахмала, грибками и цистами
других простейших, не вызывая клинически выраженного заболевания (Плаксин В. И., 1968).
30
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
В определенных условиях они могут переходить от комменсального к паразитическому образу жизни, при этом проявляя
патогенное действие в отношении хозяина. Комменсальные формы балантидий, находящиеся в просвете кишечника свиней, для
ведения паразитического образа жизни с проявлением патогенного воздействия должны проникнуть в толщу стенки кишечника
(Апанасов Р. Н., 1980). Переход балантидий от комменсального к
паразитическому образу жизни сопровождается их быстрым размножением.
В ходе исследований И. Г. Карпенко (1974) установил, что образование в кишечнике гнилостного распада ведет к усиленному
размножению данного представителя простейших. В местах временной задержки каловых масс (толстый отдел кишечника, слепая
и ободочная кишка) балантидии подвергаются действию продуктов гнилостного распада. Они начинают усиленно внедряться в
слизистую оболочку, проникая в глубокие слои кишечной стенки.
Нередко благоприятные условия для проникновения паразитов
создают гельминты. Они не играют самостоятельной роли при
протозойных заболеваниях, но, разрушая слизистую оболочку кишечника, способствуют проходу простейших, бактерий и других
агентов. Если у балантидионосителей повреждена кишечная стенка даже с незначительным кровотечением, то в содержимом кишечника появляются эритроциты, лейкоциты и клетки слизистой
оболочки, балантидии приобретают способность к гемато- и цитофагии. Паразиты проникают в слизистую оболочку и становятся
причиной заболевания.
Научные наблюдения В. Ф. Савченко (1969) показали, что балантидии, попадая в толстый отдел кишечника, внедряются в
просветы желез. Тем самым этот род паразитических инфузорий
вызывает дегенерацию и десквамацию кишечного эпителия, с
последующим развитием некротических изменений. Это ведет
к дальнейшему снижению местной сопротивляемости тканей и
расстройству деятельности органов пищеварения. Хотя балантидии локализуются в толстом отделе кишечника, они рефлекторно
вызывают воспалительную реакцию в желудке и тонком отделе
кишечника. В результате этого не происходит расщепление белков и других питательных веществ корма и нарушается процесс
всасывания. Появляется профузный понос – основной клинический симптом балантидиоза. Кроме того, нарушение функции
31
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
желудочно-кишечного тракта проявляется также и в уменьшении
количества кишечных ферментов (энтерокиназы и щелочной фосфатазы). Белковые катализаторы выделяются с каловыми массами.
В ходе нарушения пищеварительного процесса наступает интоксикация организма. Вредные вещества, выделяемые балантидиями,
поступают из толстого отдела кишечника через слизистую оболочку и воротную вену в печень. В клетках печени развивается жировая инфильтрация и зернистая дистрофия, что ведет к ослаблению функции печени, нарушению её участия в обмене углеводов,
в синтезе белков, в депонировании многих минеральных веществ
и в нейтрализации токсических продуктов. Под воздействием различных вредных продуктов, образующихся в результате распада
тканей и пищи, происходят глубокие морфологические и биохимические изменения в крови и различных органах. Они проявляются
снижением уровня гемоглобина, числа эритроцитов и увеличением количества лейкоцитов.
Взаимодействия, сложившиеся между микрофлорой и фауной
организма хозяина, расстраиваются. Первопричиной являются
стрессовые факторы: дальние перевозки животных, переохлаждение, частые перегруппировки, резкая смена состава кормов, дача
недоброкачественных кормов, обедненность рационов витаминными и минеральными добавками, антисанитарное и скученное
содержание свиней. Отдельные сапрофитные организмы теряют
роль защитника своего хозяина от патогенных паразитов. В связи
с этим создаются условия для развития патологического процесса. Заражение животного происходит тогда, когда в желудочнокишечный тракт попадают зрелые цисты балантидий. Сам же организм в это время находится в состоянии неустойчивого равновесия (Карпенко И. Г., 1974).
Содержимое желудка и тонкого отдела кишечника не оказывает
заметного влияния на жизнеспособность цист. Только в нижнем
отрезке тонкой кишки происходит эксцистирование и освобождение метацистных форм балантидий, способных к массовому
размножению. В слепой и ободочной кишках инфузории находят
наиболее приемлемые условия для своего существования благодаря обилию соответствующей кишечной флоры, кислотности
среды и других факторов. Благоприятными для роста балантидий
являются кислотность, равная 6,5 и среда с низким окислительновосстановительным потенциалом (Карпенко И. Г., 1974).
32
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
В процессе своего существования паразиты вызывают поверхностный или глубокий некроз слизистой оболочки. Они нарушают
секреторную и моторную функции кишечника. При всем этом вызывают вначале общую интоксикацию организма (нарушение обмена веществ), а затем кахексию и гибель животного.
Р. Н. Апанасов (1980), В. И. Плаксин (1968) считают, что основным условием, оказывающим влияние на развитие балантидий в
кишечнике свиней, является кормовой режим. Благополучному
развитию представителей простейших в этом случае больше всего
способствуют корма, содержащие значительное количество углеводов, в частности крахмала. При таких обстоятельствах паразиты развиваются в полости кишечника, не проникая в слизистую
оболочку кишечника, не проявляя патогенных свойств. Заболевание свиней балантидиозом наступает в том случае, если в рационе
продолжительное время отсутствуют углеводсодержащие корма.
В таких условиях инфузории данного семейства проникают в слизистую оболочку кишечника, проявляя патогенные свойства и заглатывая эритроциты.
5. КЛИНИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ
ПРИ БАЛАНТИДИОЗЕ СВИНЕЙ
Клинические признаки при балантидиозе свиней зависят от интенсивности инвазии и присутствия других паразитов
желудочно-кишечного тракта.
По данным большинства исследователей признаки спонтанного
и экспериментального балантидиоза животных следующие: понос,
угнетенное состояние, сильная жажда, анемия и быстрое исхудание, изогнутая в виде арки спина, опущенная голова - отмечали
многие специалисты.
П. С. Иванова (1941), И. Г. Карпенко (1974) и другие авторы
разделяют течение балантидиоза свиней на три формы: острую,
хроническую и латентную. Острую, в свою очередь, подразделяют
на абортивную (легкую) и тяжелую.
При неблагоприятных условиях содержания и кормления болезнь часто осложняется условно патогенной микрофлорой. Нарушение деятельности организма протекает остро и сопровождается
повышением температуры тела, диареей. Острая форма иногда
33
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
протекает легко и заканчивается выздоровлением, но чаще всего
принимает тяжелый характер. Болезнь затягивается до двух и более недель с развитием фибринозно-геморрагического колита. Такое течение заболевания составляет 86,8 % (Карпенко И. Г., 1974).
Животные угнетены, аппетит извращен или отсутствует. Фекалии
водянистые, серо- или зеленовато-грязного цвета и гнилостного
запаха с примесью слизи, а иногда и крови. Поросята становятся
анемичны, часто лежат. Их мучает жажда, временами появляется рвота. Детеныши свиньи худеют и погибают (Пауликас В. Ю.,
1990). Количество балантидий в кале нарастает постепенно. Через три-пять дней после начала поноса их обнаруживают до
30–40 в поле зрения микроскопа. Иногда всё поле зрения микроскопа заполнено этими паразитами. В таких ситуациях отмечают
прогрессивно-альтеративные изменения ретикулоэндотелиальной
системы, развитие альтеративных и экссудативных процессов, наличие язв величиной от просяного зерна и более в кишечнике. Они
заполнены творожистым содержимым темно-бурого цвета (Тимофеев Б. А., 1986).
Некоторые ученые абортивное течение заболевания отмечают у
хорошо упитанных поросят под молочными свиноматками. Так, по
данным сведениям И. Г. Карпенко (1974), под свиноматками подсвинки оказались носителями балантидий. Они легко переболели
с признаками нестойкого поноса. Аппетит сохранялся, детеныши
оставались подвижными и активными. При исследовании фекалий
в начале заболевания обнаруживали единичные вегетативные формы балантидий, с появлением поноса – цисты. При полноценном
кормлении и хорошем уходе поросята легко переболевают. Если
эти правила не соблюдать, то болезнь обострится: количество патогенных простейших резко увеличится, защитные силы организма ослабеют и поросята погибнут.
Тяжелая форма балантидиоза начинается с потери аппетита,
незначительного (1–1,5 °С) повышения температуры. Затем появляется понос. Фекалии приобретают вначале желтовато-зеленый,
потом серовато-кофейный, позже грязно-серый цвет с примесью
крови и зловонным запахом. Изменяется цвет кожи и щетины. Поросята лежат, зарываются в подстилку, залезают в жижестоки и сосут навозную жижу. Иногда они стоят, опустив голову. Спина у них
изогнута, глаза теряют блеск, глубоко западают в орбитах, живот
и бока втянуты, хвост опущен, часты позывы к дефекации. Харак34
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
терная стойка: поросенок как бы ежится от холода, не проявляет
резких движений, весь в ожидании болезненного, натужного акта
дефекации (Карпенко И. Г., 1974).
В это время поросята отказываются от корма и подолгу лежат.
Даже позывы к дефекации не поднимают их: фекалии самопроизвольно изливаются из заднего прохода. На пятый-шестой день
болезни у них повышается жажда и наблюдается извращенный
аппетит.
Особенно тяжело балантидиозные энтероколиты длятся у подсвинков при одновременном поражении их различными простейшими и гельминтами: аскаридами, трихоцефалюсами и другими.
Латентная форма балантидиоза протекает без проявления какихлибо клинических признаков (И. Г. Карпенко, 1974). При этом отмечается развитие хорошо выраженных пролиферативных процессов: клеточной инфильтрации в слизистой оболочке и дистрофических изменений в криптах. На отдельных участках слизистой
оболочки, где скапливается много паразитов, создается первичный
очаг некроза. Из него впоследствии образуется язва. В нервных
сплетениях обнаруживаются дистрофические, часто необратимые
процессы (огрубение, варикозы, распад нервных волокон и другие)
(В. Ю. Пауликас, 1990).
В нормальных условиях у большинства поросят заболевание
протекает при обычной температуре тела (высшая граница). У отдельных животных она поднимается не более чем на 1,5 °С. С повышением температуры увеличивается количество сердечных сокращений и дыхательных движений. Перед гибелью у детенышей
температура тела понижается до 36,7°С, дыхание становится поверхностным с периодическими паузами, пульс плохого наполнения, учащенный.
При хроническом течении балантидиоза поросята находятся в
угнетенном состоянии, выглядят анемичными и тощими, шерсть у
них взъерошена; бока запавшие, спина изогнута, конечности подставлены под живот. Температура тела остается нормальной, а к
концу болезни снижается до 36–37,5 °С. У больных животных отмечается аритмия сердечных сокращений, учащение пульса и дыхания. Фекалии водянистые, зеленовато-кофейного цвета с примесью слизи и крови. Аппетит слабый, иногда совсем отказываются
от корма (Карпенко И. Г., 1974).
Такие исследователи, как Р. Н. Апанасов (1980) и А. И. Ятусевич (2007), дифференцируют острое, подострое и хроническое
35
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
течение болезни. Острое течение наблюдалось преимущественно
у детенышей при резком отлучении их от свиноматок. Инкубационный период при остром течении составлял восемь-десять
суток. В первые два дня температура тела больных животных повышалась на 1–1,5 °С, а затем снижалась к норме. Появляется
кровавый понос. Фекалии приобретали темно-коричневый цвет,
содержащие примеси слизи и крови. Поросята отказывались от
корма. Они становились угнетенными, часто лежали. Слизистые
оболочки их бледнели, повышалась жажда, иногда рвота. Паразитарная реакция сильно выражена. Встречались исключительно
вегетативные формы представителей простейших с активными
движениями, некоторые их них с заглоченными эритроцитами.
Патологоанатомические изменения выражались в признаках геморрагического колита с образованием язвочек различной величины. Инвазия продолжалась от нескольких дней до трех недель.
Поросята истощались и погибали.
Подострое течение заболевания – тяжелое, продолжительностью от одной недели и больше. При этом обнаруживается масса
вегетативных форм балантидий и их единичные цисты. Патологоанатомические изменения выражаются в катаральном колите.
Вначале развивается катаральный колит, а в дальнейшем присоединяется катаральный энтерит. Исход болезни – гибель животного или переход процесса в хроническое течение, а также
латентную форму.
Клинические признаки при остром и подостром заболевании
дизентерией очень близки. Отличительные особенности заключаются в том, что при остром течении болезнь длится кратковременно и воспалительный процесс локализуется только в толстом
отделе кишечника.
Хроническое течение совпадает с характеристиками остальных
исследователей.
Наряду с этим Р. Н. Апанасов (1980) отмечает и латентную
форму балантидной дизентерии (бессимптомное носительство паразитов). Она встречается достаточно часто. В организме такого
животного немногочисленные балантидии с момента заражения
могут сохраняться на протяжении всей жизни. Паразитарная реакция слабо выражена. В фекалиях обнаруживаются вегетативные
формы и их цисты. Если балантидии находятся в большом количестве в просвете кишечника, то наблюдается легкое катаральное
36
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
воспаление слизистой оболочки ободочной и слепой кишки. Латентная форма при соответствующих условиях может переходить
в острую или хроническую.
6. ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ
ПРИ БАЛАНТИДИОЗЕ СВИНЕЙ
Большинство исследователей, изучая патологоанатомическую картину при балантидиозе свиней, наблюдали характерные
изменения в желудочно-кишечном тракте, особенно в толстых
кишках. Слизистая оболочка слепой и ободочной кишок, как правило, была утолщена, геморрагически воспалена и собрана в поперечные складки. Поверхность складок усеяна отрубевидными
легко снимающимися наложениями и язвами. Именно в них происходили основные изменения. Это рассматривалось как следствие
внедрения балантидии в поврежденную бактериями кишечную
стенку. Балантидии обнаруживали как на поверхности, так и в
глубине слизистой оболочки толстых кишок. Их находили также в
творожистых хлопьях экссудата, снятого с поверхности слизистой
оболочки толстых кишок (Карпенко И. Г., 1974).
Трупы павших и вынужденно убитых больных животных ниже
средней и неудовлетворительной упитанности. У многих животных, особенно при более длительном течении болезни, наблюдалась выраженная анемия слизистых оболочек, анемия скелетной
мускулатуры и серозных покровов грудной и брюшной полостей
(Плаксин В. И., 1968).
По данным И. Г. Карпенко (1974), при гистологическом обследовании пораженной стенки кишечника большинство балантидии
локализовалось по периферии язвенно-некротической зоны ближе
к здоровой ткани, так как в зоне некроза для них создавалась неблагоприятная среда.
При исследовании Р. Н. Аппасова (1980), гистологическая картина у всех павших, вынужденно убитых поросят характеризовалась воспалительными изменениями в толстом отделе и подвздошной кишке. Воспалительный процесс был различной интенсивности и носил катаральный, катарально-геморрагический и
некротический характер. При тяжелом течении болезни всегда
развивался некроз поверхностных и глубоких слоев слизистой
оболочки. Кроме того, была замечена резкая отечность и вос37
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
палительная инфильтрация подслизистой оболочки. Во многих
случаях в слизистой оболочке и в просвете крипты можно обнаружить значительное скопление балантидии.
По данным В. Ф. Савченко (1969), гистологические изменения
в толстом отделе кишечника характеризуются гиперемией и кровоизлияниями в слизистой оболочке. Покровный эпителий находится в состоянии дистрофии и десквамации. В экссудате, наряду со
слизью и спущенным эпителием, находилось значительное количество эритроцитов и лейкоцитоз. Слизистая оболочка и особенно
ее подслизистый слой были инфильтрированы значительным количеством нейтрофилов и лимфоцитов. С переходом в хроническую
форму в толстом отделе кишечника развивалось фибринозное воспаление с некротическим акцентом.
Ряд таких авторов, как В. И. Плаксин (1961), Р. Н. Аппасов
(1980), И. Г. Карпенко (1974), кроме характерных патологоанатомических изменений в толстых кишках, часто находили нетипичные
патологические изменения других внутренних органов и тканях.
При балантидиозе свиней наблюдали незначительное уменьшение
и уплотнение селезенки, неравномерную окраску печени, геморрагическое воспаление и даже некрозы слизистой оболочки дна желудка. Слизистая оболочка тонких кишок была или без видимых
изменений, или участками гиперемирована и отечна.
На почках и слизистой оболочке мочевого пузыря обнаруживали
слабо выраженные точечные геморрагии. Кроме того, часто отмечали различной степени поражения легких. Исследователи относят
его к самостоятельному болезненному процессу и не рекомендуют
считать его патологоанатомическим признаком дизентерии свиней.
По результатам исследований И. Г. Карпенко (1974) в начальной стадии заболевания образуются участки гиперемии и отека на
складках слизистой оболочки кишечника, затем на их месте появляются эрозии. Балантидии в большом количестве проникают в
стенку кишечника, просвет желез и межжелезистую ткань. В железах усиливается пролиферация эпителия, а в последующем, в
связи с нарушением трофики, образуется некротический распад,
который разрушает стенки железы. Балантидии выходят в межжелезистую ткань и вызывают инфильтрацию ее круглоклеточными элементами, кровоизлияние и очаги некроза. На отдельных
участках слизистой оболочки, где скапливается много паразитов,
создается первичный очаг некроза, из которого впоследствии об38
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
разуется язва. По данным П. И. Ивановой (1948), на отдельных
участках утолщенной, гиперемированной слизистой оболочки
тонких кишок наблюдаются ограниченные эрозии. При снятии
серовато-творожистых наложений с утолщенной слизистой оболочки толстых кишок Н. А. Колабский (1946) находил массовое
кровоизлияние, а местами – кровоподтеки до 1 см в диаметре. Кроме того, им отмечено увеличение и набухание мезентериальных и
лимфатических узлов.
В. И. Ридала (1960) отмечает дистрофические изменения в печени, почках и мышце сердца. Он описал у пяти свиней наличие
геморрагического воспаления в задней части подвздошной и в толстых кишках, а у девяти свиней дифтеритическое воспаление по
всей длине толстых кишок.
Х. Ш. Альмеев (1958) пришел к выводу, что при балантидиозе свиней в организме наблюдаются воспалительный процесс в
регрессивно-экссудативной форме преимущественно в толстых
кишках, слабее в тонких кишках и желудке и прогрессивноальтеративные изменения всех органов. Автор рассматривает это
заболевание как серозно-катаральный гастроэнтероколит, осложненный геморрагическим воспалением с поверхностным некрозом
эпителия слизистой оболочки.
Очень подробно патологоанатомические и гистологические
изменения, происходящие в организме в зависимости от формы
течения болезни, описал В. И. Плаксин (1961). Наибольшие изменения отмечались в средней трети ободочной кишки, реже – в
слепой, еще реже – в подвздошной кишках. При остром течении
болезни они носят характер острого катарального или катаральногеморрагического воспаления с поверхностным некрозом слизистой оболочки кишечника. Он впервые провел патогистологические
исследования нервной системы. В центральной нервной системе и
интрамуральных ганглиях толстых кишок обнаружены признаки
расстройства кровообращения: дистония стенок сосудов, гиперемия, стазы и периваскулярные отеки, а также обратимые дистрофические изменения в ганглиозных клетках – острое набухание,
хроматолиз, гидремическая дистрофия и перецеллюлярные отеки.
При подостром и хроническом течениях балантидиоза отмечается
катарально-некротическое воспаление слизистой оболочки кишечника, а в нервной системе – дистрофические, часто необратимые
процессы (огрубение, варикозы, распад нервных волокон и др).
39
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
В результате многолетних исследований Р. Н. Аппасов (1968)
установил, что при балантидиозе свиней происходит очаговое геморрагическое воспаление и образование язв на слизистой оболочке слепой и ободочной кишок. При хроническом течении болезни
патологоанатомические изменения отмечаются и в других органах:
печень дряблая, увеличена, неравномерно окрашена в сероватожелтый или буро-красноватый цвет; брыжеечные, лимфатические
узлы набухшие и гиперемированы. Иногда находят изменения в
почках, сердце и легких.
И. Г. Карпенко (1974) в своих исследованиях отметил следующие патологоанатомические изменения: желудок пустой, его слизистая оболочка утолщена и местами покрасневшая, тонкие кишки
наполнены газами, а толстые содержат жидкие фекалии; слизистая
оболочка кишок утолщена, собрана в мозговидные складки, покрыта слизью и казеозными наложениями, напоминающими россыпь
манной крупы. При слущивании казеозных наложений обнаружены язвы с изрытыми краями, мезентериальные лимфатические
узлы слегка увеличены, сочны. Печень наполнена кровью и имеет
ярко выраженную сетчатость.
Таким образом, при балантидиозе свиней, по данным исследователей, происходят изменения главным образом в кишечнике и в зависимости от течения сопровождаются катаральным, катаральногеморрагическим и катарально-некротическим воспалением слизистой оболочки кишечника.
7. ДИАГНОСТИКА БАЛАНТИДИОЗА СВИНЕЙ
Согласно «Извлечению из временной инструкции о мероприятиях по борьбе с заболеванием свиней балантидиозом» от
25 января 1984 г., диагноз на балантидиоз устанавливают на основании эпизоотологических данных, клинической картины, результатов патологоанатомического вскрытия и микроскопического исследования фекалий.
Для микроскопического исследования от 5–10 % подозрительных по заболеванию балантидиозом свиней индивидуально отбирают пробы свежевыделенных фекалий и направляют их в ветеринарную лабораторию. Материал нужно исследовать в течение
2–3 ч после его взятия, так как при понижении температуры вегетативные формы балантидии быстро разрушаются. При групповом
содержании свиней пробы фекалий берут из прямой кишки.
40
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Микроскопическое исследование можно провести непосредственно в хозяйстве. Для этого берут пробу фекальных масс величиной с горошину, а при поносах – 1–2 капли, помещают ее на
предметное стекло и смешивают с равным количеством теплого
физиологического раствора (37 °С), накрывают покровным стеклом и просматривают мазок под малым увеличением микроскопа
(7x8, 10x10). При положительных результатах в препарате видны трофозоиты и цисты балантидии. Обнаружение единичных
балантидии у клинически здоровых свиней в благополучном хозяйстве не может служить основанием для установления диагноза на балантидиоз. Но более объективные данные получают при
определении количества простейших в 1 мл фекалий. Для исследования на балантидиоз заготавливают нужное количество градуированных (центрифужных) пробирок и наливают в них по 5
мл 2–5 % водного раствора формалина. Фекальные массы, взятые
из прямой кишки животного, вносят в пробирку в количестве до
1 г, тщательно перемешивают стеклянной палочкой, после чего
пробирку закрывают резиновой пробкой. Разница между первоначальным объемом (5 мл) и полученным вследствие добавления
в фиксирующую жидкость фекалий покажет объем взятого для
исследования материала. Микроскопирование можно проводить
сразу или через несколько дней, так как материал сохраняется при
комнатной температуре в течение нескольких недель. Непосредственно перед исследованием содержимое пробирки тщательно
перемешивают или взбалтывают. Микропипеткой объемом 0,1
мл отбирают взвесь фекалий и 0,002 мл ее наносят на предметное
стекло. Сверху накладывают покровное стекло и под малым увеличением микроскопа (7x8, 10x10) просматривают всю поверхность раздавленной капли, в которой подсчитывают количество
балантидий. Обнаружение до 30 тыс. балантидии в 1 мл фекалий
свидетельствует о носительстве, от 30 до 50 тыс. – зона неопределенности, которая служит настораживающим фактором, свыше 50
тыс. – заболевание, которое, как правило, сопровождается клиническим выраженным течением.
Диагноз на балантидиозную дизентерию ставят на основании
следующих характерных признаков заболевания: угнетенное состояние, профузный понос, примесь крови в фекалиях. При этом
корм плохо усваивается, так как переваривающая способность
желудочно-кишечного тракта нарушена, и большая часть питательных веществ с фекалиями выводится из организма.
41
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
При постановке диагноза собирают данные анамнеза о больных
животных и оценивают эпизоотическую обстановку, что также
помогает предупредить энтериты. При диагностике следует учитывать, что балантидиозная дизентерия свиней часто принимает
характер энзоотии. В хозяйствах с неудовлетворительными условиями содержания и кормления инвазия становится стационарной,
при каждом опоросе возникают новые вспышки заболевания.
Из эпизоотических данных показателен большой падеж поросят отъемного возраста, и только единичные случаи падежа среди
поросят-сосунов, не достигших месячного возраста.
Для окончательного установления диагноза балантидиозной
дизентерии свиней необходимо провести гистологические исследования пораженных толстых кишок.
8. ЛЕЧЕНИЕ И ПРОФИЛАКТИКА
ПРИ БАЛАНТИДИОЗЕ СВИНЕЙ
Для лечения свиней при балантидиозе многие исследователи
испытали достаточное количество химических препаратов и антибиотиков: физиологический раствор с содержанием 1:1000 формалина, осарсол, каломель, салол, препараты висмута, креолин,
ихтиол, марганцовокислый калий, ипекакуану, осарсол + ятрен,
фуразолидон, аминарсон, биовитин. Применяли также йодинол,
раствор Люголя, альбаргин, азотнокислое серебро и следующие
антибиотики: полимицин, неомицин, биомицин, террамицин, дибиомицин, тилан и др.
Р. Н. Апанасов (1980), И. Г. Карпенко (1974) рекомендовали
осарсол задавать внутрь в виде порошка два раза в день в течение
трех дней в следующих дозах на один прием: поросятам-сосунам
20–30-дневного возраста 0,02–0,05 г, 30–60-дневного возраста –
0,05–0,1 г лечебная доза, 0,05 г – профилактическая.
Как показали исследования В. И. Плаксина (1968), применение
осарсола в сочетании с ятреном и биомицетином сопровождается
хорошим лечебным эффектом, даже при тяжелых случаях балантидиоза.
Установлено, что в случаях острого заболевания хороший терапевтический эффект, по мнению ученых И. Г. Карпенко (1974),
Р. Н. Апанасова (1980), А. И. Ятусевич (2007), дает применение
ятрена. После одного курса лечения (0,05 г/кг, два раза в день, три
42
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
дня подряд) у 50 % поросят выделение паразитов прекратилось.
При повторном лечении выздоровление наступало у 96,5 % больных животных. При хроническом балантидиозе терапевтическое
действие ятрена было не эффективно.
По сведениям Р. Н. Апанасова (1980), эффективным является
комбинированное лечении осарсолом вместе с ятреном в течение
шести дней по следующей схеме: впервые три дня осарсол два раза
в день и три последующие дня – ятрен внутрь и в виде клизмы.
Доза ятрена внутрь – 0,05 г/кг живой массы с одновременными
клизмами (1:500) два раза в день. Между тем многие исследователи отмечают, что эффективность лечения повышается при одновременном применении нативного биовитина и осарсола. Лечение
осарсолом приводит к некоторому клиническому улучшению, однако при этом могут быть рецидивы.
По наблюдениям В. А. Ридала (1967) и Р. Н. Апанасова (1980),
после применения осарсола у поросят были отмечены рецидивы
заболевания после выздоровления через 7–9 дней.
Учитывая нерастворимость осарсола в воде и спирте, И. Г. Карпенко (1974) предложил применять его внутрь в 2,5%-ной концентрации на 0,1 %-ном содовом растворе. Дозы его раствора увеличены в 4 раза по сравнению с дозами сухого вещества. Этим препаратом (СТ. Щенников, 1946) лечил 900 свиней, из них от 97 до 100 %
заболевших животных выздоровели.
П. С. Иванова (1940) осарсолом лечила 26 больных балантидиозом свиней. Из них понос прекратился у 21 головы, но выделение
паразитов прекратилось только у восьми голов, а рецидивы в период от 6 до 10 дней наблюдались у девяти голов.
Р.Н. Апанасов (1980) рекомендовал применять внутрь мышьяковистый ангидрид из расчета 0,0015 г сухого вещества на один
прием. Препарат предварительно растворяли в 2 %-ном растворе
двууглекислой соды, подогревали на водяной бане и задавали с
кормом по 1 мл на животное утром и вечером в течение 5 дней.
Использование данного препарата в хозяйствах, по свидетельствам И. Г. Карпенко (1974) и Р. Н. Апанасов (1980), позволило полностью избавиться от возбудителя.
И. Г. Карпенко (1974) наблюдал положительные результаты
также при применении мышьяковистого олова. Терапевтическое
действие на больных балантидиозом поросят данный препарат
оказывает в дозе 30–40–60 мг/кг. В фекалиях исчезают баланти43
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
дии, улучшается общее состояние больных детенышей. Однако
полной стерилизации организма от паразитов не наступает. Через
7–10 дней после скармливания препарата с фекалиями вновь выделяются балантидии и количество их постепенно увеличивается.
С терапевтической целью в свиноводческих хозяйствах также
используются антибиотики. Биомицин применяли в 1%-ном растворе в дозе 25 мл, а синтомицин – в 10 %-ном растворе по 5–6 мг
два раза в день в течение трех-пяти дней. По наблюдениям специалистов (В. А. Ридала (1967), И. Г. Карпенко (1974), П. С. Иванова (1956)), терапевтическое действие антибиотиков было положительным, и в дальнейшем рецидивов заболевания не отмечено.
Нельзя не отметить данные И. Г. Карпенко (1974), который получил обнадеживающие результаты при лечении балантидиозной
дизентерии свиней с применением комбинации препаратов Диарсона и защитного аддитива «Плива». Для поросят весом до 25 кг
рекомендуются дозы препарата: профилактические – 0,2–0,3 %,
лечебные – 0,4–0,5 %; для откармливаемых свиней – соответственно 0,05–0,1 и 0,2–0,3 % к массе корма. Применение этих лекарств
вместе с кормом дает 100% профилактический эффект, в терапии –
удовлетворительные результаты.
Согласно результатам Б. А. Тимофеева (1986), И. Г. Карпенко
(1974), при лечении поросят высокий эффект оказывал йодинол.
Подсвинкам в возрасте 4–6 мес. препарат давали с небольшими
порциями корма или питьевой водой в дозе 2–25 мл на один прием
два раза в день в течение 7–10 дней. По лечебным свойствам он
не уступил осарсолу. При лечении йодинолом процент выздоровления поросят-сосунов составлял 94,1, при лечении осарсолом –
87,5. Применение йодинола, а затем с профилактической целью
нативного биомицина почти полностью ликвидировал балантидиоз свиней в опытном хозяйстве.
Следует учитывать исследования И. Г. Карпенко (1974),
Р. Н. Апанасова (1980). Они показали, что хорошее терапевтическое
действие на организм поросят оказывал раствор Люголя. В начальной стадии заболевания, когда у детенышей еще сохранялся аппетит, применяли люголевский раствор с молоком или йодированное
молоко, давали эту смесь вместо воды в течение трех дней.
В. А. Савченко (1969), П. В. Бонка (1974) отметили положительное действие фуразолидона в дозе 20 мг/кг живой массы, два раза
в день, в течение 5 дней. Аналогичные данные были получены
44
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
И. Г. Карпенко (1974), Р. Н. Апанасовым (1980), но курс лечения
иной – 0,01 г/кг три раза в день в течение трех-пяти дней.
Положительные результаты достигнуты при использовании
осарсола с фуразолидоном, осарсола с ятреном, а также ятрена, фталазола с порошком дубовой коры, сульфантрола с пенициллином.
В медицинской практике для лечения заболеваний протозойной
этиологии успешно используют метронидазол (трихопол), трихомоноцид, энтеросептол, синтомицин и другие.
И. Г. Карпенко испытал некоторые из них и получил следующие
результаты – энтеросептол скармливали поросятам за две недели
до отъема в дозе 30 мг/кг в течение трех-пяти дней с интервалом
десять дней. В дальнейшем это позволило не допустить вспышки
балантидиоза при выращивании молодняка.
Р. Н. Апанасов (1980) задавал с кормом метронидазол (трихопол) два раза в день по 0,25 г на одно животное два-три раза через
7–10 дней.
При дизентерии свиней различной этиологии исследователи
П. И. Притулин и Д. В. Лобунцова (1973) рекомендовали применять дипасфен и тилан.
Дипасфен – комбинированный препарат, сотоящий из равных
частей дибиомицина, пассомицина и феноксиметилпенициллина.
Лекарство обладает широким диапазоном антимикробного действия. Поросятам-сосунам раствор препарата вводят через рот, через семь дней обработку повторяют.
Тилан – антибиотик широкого диапазона действия. С лечебной
целью тилан для инъекций в дозе 0,025 мг/кг вводили внутримышечно два раза в день с интервалом два-три дня; для профилактических целей в той же дозировке - однократно.
А. Ф. Манжос, В. С. Сумцов, Н. М. Лапшин (1982) испытали
действие тилана и трихопола. В результате поносы у поросят прекратились на 2 день после начала лечения, снизилось количество
трофозойдов, животные оказались клинически здоровыми.
В. А. Сидоркин (2002) отмечает, что отличный терапевтический
эффект при балантидиозе свиней оказывает «Метронид 50 – инъекционный раствор метронидазола пролонгированного действия.
При двукратном внутримышечном введении препарата с интервалом 48 часов в дозе 2 мл/10 кг живой массы приводил к 100 %
выздоровлению, при дозе 1 мл/10 кг – 96 %. Пероральное введение
лекарства с питьевой водой в дозе 2,0 мл/л в течение трех дней
45
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
позволял добиться выздоровления около 94 % больных животных.
Полное выздоровление животных наступало после двух инъекции
метронида, при этом курс лечения составлял всего три дня. Кроме того у большинства поросят, принимавших препарат, признаки
диареи прекращались уже на следующий день после первого введения препарата.
В случае клинически выраженного балантидиоза и проявления
дисбактериоза В. Ю. Пауликас (1990) рекомендовал использовать
бактериальные препараты АБК, ПАБК. ПАБК применяли 1 раз в
день в смеси с кормом или добавляли в молоко, обрат, воду. Однократные дозы при условии содержания в препарате 1000–3000 мкг
витамина В12 в 1 л следующие: поросятам 15–30-дневного возраста – 20–25 мл, старше 30 дней –30 мл, свиноматкам – 100 мл. АБК
поросятам старше 30 дней применяют по 30–40 , взрослым свиньям – 70–140 мл.
Одновременно с применением любого из препаратов необходимо улучшать кормление животных, включать в рацион молоко,
витамины (тривит, тетравит), глюконат кальция.
Полноценные и доброкачественные корма, строгое соблюдение
ветеринарно-санитарных правил, недопущение разного рода стрессовых состояний и других факторов, снижающих резистентность
организма животного – главные профилактические мероприятия
против балантидиоза свиней (Пауликас В. Ю., 1990).
Известно, что упитанные животные менее восприимчивы к
различным инфекционным и инвазионным заболеваниям. Поэтому они легче переносят заболевания по сравнению с истощенными. Условия кормления и содержания имеют большое значение в профилактике балантидиозной дизентерии. В хозяйствах
требуется правильно организовывать кормление и содержание
не только молодняка, но и свиноматок, хряков. Это даст возможность получать здоровый, полноценный приплод. При организации кормового режима свиней и составлении рациона, прежде
всего надо учитывать все необходимые питательные вещества,
определенные нормами, в зависимости из живой массы животного (Апанасов Р. Н., 1980).
Наряду с проведением лечебных мероприятий нужно улучшать
санитарно-гигиенические условия содержания животных.
Вода должна быть всегда чистой. Полезно чередовать дачу
воды с раствором марганцового калия 1:1000, АБК и ПАБК. Боль46
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
шое значение в профилактике балантидиоза имеет подготовка места для супоросных маток и будущих поросят. За две-три недели
до опороса помещение свинарника-маточника должно быть отремонтировано, тщательно очищено и дважды продезинфицировано. Перед размещением животных станки белят известью, полы
посыпают негашеной известью и стелют чистую свежую солому
(Карпенко И. Г., 1974).
При заболевании поросят в подсосный период с подозрением на
балантидиоз их изолируют вместе с матками и обрабатывают лечебными препаратами. Станки и проходы дезинфицируют. Свинарник
для поросят-сосунов, свиноматок и других возрастных групп животных, а также места их выгулов и кормушки нужно содержать в
чистоте. Кормушки рекомендуется после тщательной очистки периодически обваривать кипятком. Ни в коем случае не допускать
подметания испражнений метлой, так как при этом цисты балантидий, амебы, находящиеся в испражнениях, рассеиваются по территории. После уборки каловых масс очищать все помещение не менее
двух раз в день с последующей дезинфекцией загрязненных мест, а
также предметов ухода за животными (лопаты, метлы и др.). Дезинфицировать лучше всего 5% горячим раствором каустический соды
или 8–10 % горячим раствором негашеной извести с последующим
смачиванием водой (Апанасов Р. Н., 1980).
Отъем поросят – самый важный и ответственный период в предупреждении распространения заболевания. В это время происходит концентрация поголовья, меняется кормление. Это отрицательно влияет на устойчивость поросят к различным возбудителям, в
том числе к балантидиям. В летний период свиней содержат в лагерях. Лагерные территории периодически меняют. Длительное пребывание животных на одном участке может привести к вспышке
заболевания. Свинарники дезинфицируют и периодически закрывают. Территорию свинофермы следует запахать. (Карпенко И. Г.,
1974; Апанасов Р. Н., 1980).
В хозяйстве необходимо организовывать ветеринарнопросветительную работу среди персонала, ухаживающего за свиньями. В связи с этим надо проводить санитарные мероприятия,
снабжать людей спецодеждой, дезсредствами, щетками, полотенцами, а в свинарнике установить умывальник для мытья рук.
Также надо проводить разъяснительную работу и среди населения
данной территории об инфекционных болезнях свиней, поскольку
47
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
человек является также восприимчивым к балантидиозу и может
заразиться от больных животных (Апанасов Р. Н., 1980).
9. РАЗРАБОТКА И ИЗУЧЕНИЕ
ЭФФЕКТИВНОСТИ НОВЫХ СПОСОБОВ
ЛЕЧЕНИЯ И ПРОФИЛАКТИКИ
ПРИ БАЛАНТИДИОЗЕ СВИНЕЙ
В настоящее время для лечения свиней, больных балантидиозом, применяют различные препараты. Однако они не позволяют добиться полного излечения всего пораженного поголовья,
действие их кратковременное, и при новой вспышке необходимо
повторное применение. Кроме того, многие препараты, используемые при борьбе с балантидиозом, имеют химическую природу, что
отрицательно сказывается на организме животных. Поэтому нами
была поставлена задача создания безопасных биологически активных препаратов на основе веществ природного происхождения,
которые могут быть использованы для осуществления патогенетической терапии при балантидиозе свиней.
В процессе получения меда пчеловодам приходится выполнять целый ряд операций, которые приводят к получению побочных продуктов пчеловодства. Одним из таких продуктов является
трутневый расплод. В период бурного развития семей пчеловоды
вынуждены обрезать преимагинальные фазы (трутневый расплод)
трутней. Удаление трутневого расплода из пчелосемьи необходимо
также для профилактики варроатоза – опасного заболевания, которое может привести и к гибели пчел. Поэтому иногда пчеловоды
специально выращивают трутней, получая за сезон до 4 кг трутневого расплода с одного улья. Это ценный материал для получения
биологически активных препаратов, так как в состав трутневого
расплода входят все незаменимые аминокислоты, микроэлементы,
гормоны, жиры, хитозан и другие вещества.
Личинки трутней – отход пчеловодства, биологическая активность которого по некоторым показателям даже выше, чем у маточного молочка. В состав личинок входят водо- и жирорастворимые витамины: витамин А, ксантофилл, витамин В12, никотиновая
кислота, холин, витамин Д; микро- и макроэлементы: кальций,
магний, натрий, марганец, медь, цинк. Протеины представлены
48
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
преимущественно свободными заменимыми и незаменимыми
аминокислотами. Благодаря такому набору веществ, трутневое молочко способствует ускоренному восстановлению биохимических
характеристик крови, выступает стимулятором центральных механизмов регуляции обмена веществ (Немцов С. В., Зуева О. Ю., Хисматуллин Р. Г., Хисматуллин М. Р., Лариков В. В., Варламов В. П.,
2001; Машенков О. Н., 2005). По данным клинических исследований этот продукт может регулировать деятельность центральной
нервной системы, стимулировать общее состояние организма, повышать аппетит, улучшать сон.
Одним из направлений нашей работы стала разработка новых
целевых продуктов – биологически активных препаратов на основе преимагинальных фаз трутней и других побочных продуктов
пчеловодства, которые можно было бы использовать в животноводстве и ветеринарии для стимуляции организма животных с целью повышения их резистентности, увеличения продуктивности,
количества приплода, для профилактики и лечения заболеваний
инвазионной, инфекционной и незаразной этиологии.
9.1. Испытание эффективности биологически
активного лиофилизированного препарата
из преимагинальных фаз трутней
при балантидиозе свиней
Как показали исследования последних десятилетий (Манжос А. Ф., 1982, 1983, 1984, Сафиуллин Р. Т., 2002) балантидиоз
возникает, как правило, при нарушении режимов кормления и содержания, при кишечных инфекциях, что приводит к снижению
резистентности организма и развитию иммунодефицита (Бочкарев
В. Н., 1993; Гончаров С. К., 1993).
Для лечения свиней больных балантидиозом используют метронидазол, фуразолидон, и сульфаниламиды, однако они не
всегда эффективны, так как в организме животных при данном
заболевании происходят изменения, требующие патогенетической терапии.
На первых этапах нашей работы мы разработали и получили
стерильный и безвредный лиофилизированный препарат из преимагинальных фаз трутней (ЛПФТ), который был испытан на лабораторных животных – кроликах, при этом получены положительные результаты.
49
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Однако для того, чтобы использовать эти препараты для лечения, профилактики заболеваний и стимуляции организма животных, необходимо испытать их действие на организм тех видов животных, на которых они будут применяться.
Для выяснения влияния лиофилизированного препарата из
преимагинальных фаз трутней на организм свиней был проведены
2 следующих опыта.
В первый опыт были взяты 14 здоровых поросят-отъемышей
(2-месячного возраста). Их разделили на 2 группы по семь животных и содержали поросят в одинаковых условиях, но в двух изолированных друг от друга клетках. Животным первой группе в течение 15 дней скармливали вместе с кормом разведенный дистиллированной водой 1:10 лиофилизированный препарат в дозе 0,5
мл/кг массы тела ежедневно и в последующем изучали некоторые
биохимические показатели крови этих поросят.
Исследовали: содержание общего белка, липопротеидов низкой плотности (ЛПНП), фосфора и кальция. Кровь для исследования брали до скармливания, через 15 и 30 дней после применения препарата. Семи поросятам контрольной группы препарат не
скармливали. Полученные данные обрабатывали на компьютере с
помощью статистической программы «Biostatic». Результаты исследований приведены в таблице 11.
Таблица 11
Некоторые биохимические показатели сыворотки крови поросятотъемышей при скармливании лиофилизированного препарата
Результаты исследований
Группа
Сроки взятия
крови
Общий ЛПНП,
белок, г%
г/л
Сиаловые кислоты
Са,
моль/л
Р, моль/л
Опыт- До опыта
ная
Через 15 дней
(n = 7) Через 30 дней
5,05±0,081 0,38±0,041 0,413±0,02 2,92±0,71 2,13±0,042
5,55±0,077 0,40±0,042 0,92±0,034 3,22±0,097 2,230,059
5,39±0,089 1,2±0,055 0,64±0,414 3,91±0,096 2,324±0,088
Конт- До опыта
роль
Через 15 дней
(n = 7) Через 30 дней
6,29±0,023 1,7±0,051 0,57±0,027 2,72±0,045 1,447±0,074
5,94±0,077 1,9±0,064 0,65±0,039 2,37±0,0,33 1,291±0,019
5,45±0,034 2,9±0,047 1,02±0,039 2,295±0,021 1,13±0,087
Примечание: ЛПНП – липиды низкой плотности; n – количество животных в группе.
50
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Анализируя полученные данные, следует отметить, что у поросят опытной группы содержание общего белка на 15-й день применения препарата увеличилось на 9,9 %, на 30-й день – на 6,7 %
по сравнению с исходным уровнем. Содержание общего белка у
поросят контрольной группы снижалось на протяжении всего периода наблюдения (рис. 11).
7
6
5
4
ɤɨɧɬɪɨɥɶɧɚɹ ɝɪɭɩɩɚ
3
ɨɩɵɬɧɚɹ ɝɪɭɩɩɚ
2
1
0
ɞɨ
15 ɞɧɟɣ 30 ɞɧɟɣ
ɨɩɵɬɚ
Рисунок 11. Содержание общего белка в сыворотке крови поросят
Уровень ЛПНП у поросят опытной группы увеличивался на протяжении всего периода исследования, на 30-й день был вдвое больше по сравнению с исходными данными. У поросят контрольной
группы содержание ЛПНП увеличилось на 15-й день на 11,7 %, на
30-й день – на 70,5 %.
Содержание сиаловых кислот в крови поросят опытной группы
на 15-й день увеличилось в два раза, к 30 дню – на 54,2 %. Уровень
сиаловых кислот у поросят в контрольной группе увеличивался на
протяжении всего периода наблюдения, на 30-й день этот показатель был вдвое больше по сравнению с исходным.
Содержание кальция в крови поросят опытной группы на протяжении всего периода наблюдения увеличивалось, и на 30-й день
было на 33 % больше по сравнению с исходными данными, в то
время как в контрольной группе уровень этого показателя снижался (рис. 12).
51
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
4
3,5
3
2,5
2
ɤɨɧɬɪɨɥɶɧɚɹ ɝɪɭɩɩɚ
1,5
ɨɩɵɬɧɚɹ ɝɪɭɩɩɚ
1
0,5
0
ɞɨ
15 ɞɧɟɣ 30 ɞɧɟɣ
ɨɩɵɬɚ
Рисунок 12. Содержание кальция в крови поросят
Содержание фосфора в опытной группе увеличивалось на протяжении всего времени наблюдения, и на 30-й день уровень его
превышал исходный на 9%. В то же время содержание фосфора в
крови поросят контрольной группы снижалось (рис. 13).
2,5
2
1,5
ɤɨɧɬɪɨɥɶɧɚɹ ɝɪɭɩɩɚ
ɨɩɵɬɧɚɹ ɝɪɭɩɩɚ
1
0,5
0
ɞɨ ɨɩɵɬɚ
15ɞɧɟɣ
30 ɞɧɟɣ
Рисунок 13. Содержание фосфора в крови поросят
Отношение кальция к фосфору в обеих группах на протяжении
всего опыта было 2:1.
Во втором опыте по изучению биохимических показателей сыворотки крови поросят использовали 19 животных. В опытную
группу вошли 12 поросят, содержащиеся вместе со свиноматкой,
которым, начиная с 14-дневного возраста, скармливали вместе с
52
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
кормом разведенный дистиллированной водой 1:10 ЛПФТ в дозе 1
мл/кг массы тела в течение 30 дней. В контрольную группу вошли
7 поросят, также содержавшихся с другой свиноматкой, но не получавших ЛПФТ.
Исследовали биохимические показатели сыворотки крови: общий белок, уровень ЛПНП, фосфора и кальция. Пробы крови брали у поросят на 14, 30 и 55 дни жизни.
Анализируя данные, полученные во втором опыте, мы отметили, что у поросят опытной группы содержание общего белка на
30-й день жизни увеличилось на 9,9 %, на 55-й день жизни на 6,7 % по сравнению с исходным уровнем. Содержание общего белка у поросят контрольной группы снижалось на протяжении всего
периода наблюдения.
Уровень ЛПНП у поросят опытной группы увеличивался на
протяжении всего периода исследования, на 55-й день был вдвое
больше по сравнению с исходными данными. У поросят контрольной группы содержание ЛПНП увеличилось на 30 день – на 11,7 %,
на 55-й день – на 70,5 %.
Содержание кальция в опытной группе на протяжении всего
времени наблюдения увеличивалось, и на 55-й день его было на
33 % больше по сравнению с исходными данными, в то время как
в контрольной – уровень кальция снижался (табл. 12).
Таблица 12
Некоторые биохимические показатели сыворотки крови подсосных поросят при скармливании лиофилизированного препарата
Показатель
Общий
белок, г %
ЛПНП, г/л
Кальций,
моль/л
Фосфор,
моль/л
Опытная группа, n = 12
Результаты исследований
на, день жизни
14 (до приме30
55
нения ЛПФТ)
5,05±
0,0810
0,38±
0,0407
2,919±
0,0710
2,131±
0,0420
5,55±
0,0771
0,40±
0,0421
3,218±
0,0970
2,228±
0,0590
Контрольная группа, n = 7
Результаты исследовании
на, день жизни
14
5,39± 6,29±
0,0879 0,0230
1,20± 1,70±
0,0556 0,0513
3,907± 2,719±
0,0960 0,0453
2,324± 1,447±
0,0875 0,0739
30
55
5,94±
0,0770
1,90±
0,0644
2,370±
0,0330
1,291±
0,0196
5,45±
0,0340
2,90±
0,0477
2,295±
0,0213
1,130±
0,0870
53
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Содержание фосфора в опытной группе увеличивалось на протяжении всего времени наблюдения, и на 55-й день его было на
9 % больше по сравнению с исходными данными. В то время как в
контрольной группе содержание фосфора снижалось.
Отношение кальция к фосфору в обеих группах на протяжении
всего опыта было в норме: 2:1.
Таким образом, было установлено, что лиофилизированный
препарат, разведенный 1:10 дистиллированной водой и введенный
как подсосным, так и поросятам-отъемышам per os, оказывает положительное влияние на биохимические показатели сыворотки
крови этих животных.
На следующем этапе мы испытали разработанный лиофилизированный препарат из преимагинальных фаз трутней (ЛПФТ) при
лечении свиней, больных балантидиозом. В задачи исследования
входило:
1) изучение эффективности ЛПФТ при лечении свиней, больных балантидиозом;
2) изучение профилактической эффективности ЛПФТ при балантидиозе свиней.
В первом опыте использовали 10 поросят 2-х месячного возраста, живой массой 14–15 кг, у которых наблюдали клинические признаки балантидиоза: понос, цианоз видимых слизистых оболочек и
кожи, угнетение, отсутствие аппетита, исхудание. При исследовании нативных мазков из теплых фекалий от больных поросят, в поле
зрения микроскопа обнаруживали от двух до пяти движущихся балантидий. Больных поросят разделили на 2 группы по 5 голов.
Пяти животным первой группы после внутримышечного введения метронида-50 (1мл/10кг массы тела двукратно, с интервалом 48
часов), в течение 30 дней, один раз в сутки с корм групповым методом, добавляли разведенный дистиллированной водой 1:10 лиофилизированный препарат из преимагинальных фаз трутней (ЛПФТ)
в дозе 1мл/кг массы тела. Поросятам второй (контрольной) группы
вводили только метронид-50 в тех же дозах, что и первой группе.
Во время опыта животные находились в одном помещении, в
одинаковых условиях содержания, но в разных станках; корма животные получали одинаковые.
Учёт результатов проводили до начала лечения и на 3, 6, 9, 12,
15, 18, 21, 24, 27 дни после начала лечения. Исследовали нативные
мазки из фекалий, определяли средний вес и клиническое состояние поросят обеих групп.
54
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Анализ результатов исследований показал, что в первом опыте
у больных поросят опытной группы с 15-го дня применения ЛПФТ
и до окончания опыта (т. е. через 30 дней) балантидий в исследуемых мазках не обнаруживали. У животных контрольной группы
балантидий обнаруживали на протяжении всего опыта. На 15-й
день во второй группе пало 2 поросёнка (табл. 13).
Средняя масса поросят первой группы к окончанию опыта увеличилась в среднем на 3,2кг, а у поросят второй группы - снизилась на 1,5 кг.
Таким образом, использование препарата из преимагинальных
фаз трутней в комплексе с метронидом-50 для лечения поросят,
больных балантидиозом, способствует излечению и увеличению
средней массы поросят на 3,2 кг по сравнению с контролем.
Во второй опыт по изучению профилактической эффективности
ЛПФТ было взято 12 здоровых поросят 15-тидневного возраста,
живой массой 5–5,5 кг, которым с 15 по 45 дни жизни, один раз в
сутки добавляли в корм предлагаемый препарат, разведенный 1:10
дистиллированной водой в дозе 1 мл/кг массы тела. Контролем служили 7 поросят 15-ти дневного возраста, живой массой 5,1–5,8 кг,
которым препарат не давали; они находились в соседнем станке.
Эффективность препарата определяли на 35, 40, 45, 50, 55, 60-й
дни жизни поросят путём наблюдения за клиническим состоянием,
исследования фекалий на наличие балантидий и взвешивания поросят
с целью определения средней массы и среднесуточного прироста.
Анализируя данные, полученные во втором опыте, следует отметить, что у поросят опытной группы вегетативных форм балантидий в исследуемых мазках не обнаруживали на протяжении всего опыта (единичные цисты). В то время как у поросят контрольной группы балантидий были обнаружены уже на 35-й день жизни,
а на 45-й и 50-й дни жизни у 5 поросят данной группы появились
явные клинические признаки балантидиоза. В контрольной группе
пало 2 поросёнка, произошло это на 50 день жизни (табл. 14).
Средняя живая масса поросят опытной группы с 35-го по 60-й
день жизни увеличилась на 6,2 кг, среднесуточный прирост по
группе составил 293 г. В то время как в контрольной группе заболело балантидиозом пять из семи животных, из которых два
пало. Кроме того, у выживших поросят за период опыта (30 дней)
средняя живая масса увеличилась всего лишь на 0,6 кг, а среднесуточный прирост составил 78,3 г., то есть в 3 раза меньше, чем у
животных опытной группы.
55
56
0
Пало, гол.
0
3
3
0
3
6
12
0
2
0
2
Первая группа (п = 5)
9
0
0
15
0
0
18
Результаты исследований через ..., дней
0
0
21
0
0
24
0
0
27
0
Пало, гол.
0
1
0
1
0
3
0
3
2
4
0
4
0
4
0
5
0
5
Примечание: Р<0,05
Средняя масса, кг 15,5±0,2 15,5±0,2 15,5±0,2 15±0,4 15±0,4 14,7±0,3 14,5±0,1 14,3±0,5 14,1±0,5 14±0,2
2
Кол-во балантидий в фекалиях
Контрольная группа (п = 5)
Средняя масса, кг 14,5±0,3 14,5±0,3 14,5±0,3 15±0,1 15,5±0,4 15,7±0,2 16,3±0,3 16,7±0,5 17,2±0,4 17,7±0,2
5
До
опыта
Кол-во балантидий в фекалиях
Показатель
Таблица 13
Эффективность лиофилизированного препарата из преимагинальных фаз трутней
при балантидиозе поросят в комплексе с метронидом-50
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
0
0
1
0
0
1
0
0
1
55
0
0
1
60
240±14,8
0
0
5
0
5
2
5
3
240±15,1
0
4
4
220±14,4
0
2
5
300±13,7
Примечание: Р<0,05
40±2,8
40±3,2
20 ±1,2
0
20 ±1,4
340±18,8 350 ±16,4
0
0
2
5
260±12,6
Контрольная группа (п = 7)
500±17,8
Среднесуточный прирост, г.
0
Пало, гол.
0
0
1
50
15,2±0,34 16,4±0,45 17,7±0,38 18,9±0,41 20,0±0,42 21,5±0,66
0
0
1
45
5,45±0,12 12,5 ±0,24 12,7±0,35 12,9±0,27 13,0±0,33 13,0±0,33 13,1 ±0,26
0
Заболело
40
Опытная группа (п = 12)
35
Результаты исследований на ..., день жизни
Средняя живая масса, кг
0
Обнаружено балантидий
(ве-гет.), кол-во
335±19,2
Среднесуточный прирост, г.
0
Пало, гол.
5,2±0,10
0
Заболело
Средняя живая масса, кг
2
15
Кол-во балантидий
в фекалиях (цисты)
Показатель
Таблица 14
Профилактическая эффективность лиофилизированного препарата из преимагинальных фаз
трутней при балантидиозе свиней
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
57
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Таким образом, препарат из преимагинальных фаз трутней, применяемый в указанной выше дозе и кратности, является высокоэффективным средством для профилактики балантидиоза свиней.
9.2. Разработка и оценка эффективности порошков
из личинок трутней для лечения свиней
с ассоциативным течением балантидиоза
Учитывая те факты, что балантидиоз у свиней чаще протекает в ассоциации с пастереллезом, а при лечении поросят лиофилизированным препаратом из преимагинальных фаз трутней цисты
балантидий остаются в фекалиях на протяжении всех опытов, которые могут послужить источником заражения, мы поставили перед
собой цель разработать комплексный препарат из личинок трутней и антимикробных препаратов (тилозин и диметридазол) для
повышения резистентности организма и лечения свиней, больных
балантидиозом в ассоциации с пастереллезом и сальмонеллезом
(получен патент на изобретение № 2446812 от 10 апреля 2012).
9.2.1.
Разработка способа получения порошка
из личинок трутней
Известен способ приготовления порошка «Билар» из биомассы трутневых, маточных личинок и личинок рабочих особей
пчел путем сублимационного вакуумного высушивания, при этом
порошок «Билар» не токсичен, не патогенен, не вызывают побочных эффектов и аллергию (см. «Биологическая и пищевая ценность
порошков «БИЛАР», А. И. Черкасова, И. А. Прохода, С. К. Мельникова, журнал Пчеловодство. 2005. № 2. С. 58–59).
Недостатком данного способа являются высокие затраты на получение лечебного продукта.
Известен способ получения спиртового экстракта личинок
большой восковой моли, включающий сбор личинок, их гомогенизацию, с добавлением стабилизирующей среды (см. «Новая жизнь
старого лекарства», А. К. Рачков, М. Н. Конрашова, Н. А. Спиридонов, журнал Пчеловодство. 2000. № 5. С. 58–59).
Недостатком данного способа является непродолжительное
время хранения препарата.
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому
положительному эффекту и принятый нами за прототип является
способ приготовления препарата для стимуляции организма жи58
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
вотных из личинок трутней, включающий сбор личинок трутней,
их гомогенизацию с добавлением стабилизирующей среды, при
этом перед гомогенизацией личинки трутней замораживают при
температуре (–4; –5 °С) в течение 12–14 часов, затем размораживают в течение 3–5 минут до +18° С, при этом в качестве стабилизирующей среды используют 5 % раствор глюкозы в соотношении
1:10 с добавлением 5 % раствора хлороформа или 2 % салициловой кислоты с последующей сублимацией, причем сублимацию
проводят в вакуумной камере при температуре подогрева полок
до 30–45 °С, при этом при достижении температуры препарата
20–22 °С температуру полок снижают до 25°С и производят досушивание в течение 22–24 часов. (см. пат. RU № 2258522, МПК
А61К 35/64, А61Р37/04, опубл. 20.08.2005 г.).
Недостатком данного способа получения препарата является
его невысокая эффективность повышения общей и специфической
стимуляции организма животных при лечении балантидиоза и пастереллеза.
В качестве основы для приготовления порошков использовали
10–12-дневные личинки трутней.
Для поиска наиболее оптимального способа получения порошка из личинок трутней нами было проведено 4 опыта:
Опыт № 1. На пасеке проводили сбор 10–12-дневного
возраста личинок трутней
вместе с трутневым молочком, затем перед гомогенизацией
их замораживали
при –4°С, выдерживали в
течение 12 часов и размораживали в течение 3–5 часов
при комнатной температуре
(+18–20 °С), затем после размораживания (рис. 14) перед
Рисунок 14. Личинки трутней
гомогенизацией
личинки
после первой разморозки
трутней вторично замораживали в течение 24 часов
(–5 °С) и снова размораживали в течение 8–10 часов, затем проводили сушку под потоком
теплого воздуха при температуре 25–30 °С и досушивали в термо59
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
стате при температуре 120–125 °С в течение 4–5 часов, при этом
сухой материал гомогенизировали в течение 30–60 с.
Получали однородный порошок красно-коричневого цвета, с
запахом гари, специфичным неприятным запахом и плохо смачивающимся.
Опыт № 2. Проводили аналогично примера 1, но перед гомогенизацией личинки трутней замораживали при –5 °С, выдерживали в течение 14 часов
и размораживали в
течение 3–5 часов при
комнатной температуре (+18–20 °С), затем
после размораживания перед гомогенизацией личинки трутней
вторично замораживали в течение 60 часов
(–18 °С) и снова размораживали в течение 4,0–5,0 часов, затем проводили сушку
Рисунок 15. Личинки трутней после сушки под потоком теплого
под потоком теплого воздуха
воздуха (рис. 15) при
температуре 55 °С до
полного исчезновения жидкости с поверхности личинок и досушивали в термостате при температуре 80 °С в течение 3,5–4,0 часов,
при этом сухой материал гомогенизировали в течение 30–60 с.
Результат: получили однородный порошок красно-коричневого цвета, с приятным специфическим запахом и хорошо смачивающимся.
Опыт № 3. Проводили аналогично примера 1, но вторичное
замораживание проводили в течение 72 часов при температуре
(–20 °С). затем размораживали в течение 4,0–5,0 часов, проводили
сушку под потоком теплого воздуха при температуре 60 °С до полного исчезновения жидкости с поверхности личинок и досушивали в термостате при температуре 85 °С в течение 3,5–4,0 часов, при
этом сухой материал гомогенизировали в течение 30–60 с.
Результат: получали однородный порошок красно-коричневого
цвета, с приятным специфическим запахом и хорошо смачивающимся.
60
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Опыт № 4. Проводили аналогично примера 1, но вторичное
замораживание проводили в течение 75 часов при температуре
(–20 °С). затем размораживали в течение 4–5 часов, проводили
сушку под потоком теплого воздуха при температуре 65 °С до полного исчезновения жидкости с поверхности личинок и досушивали в термостате при температуре 90 °С в течение 3,5–4,0 часов, при
этом сухой материал гомогенизировали в течение 30–60 с.
Результат: получали однородный порошок красно – коричневого цвета, с приятным специфическим запахом и хорошо смачивающимся.
Необходимые результаты были получены в опыте 2, 3 и 4, но
для дальнейшего использования нами был выбран следующий
способ: личинки трутней замораживали при –5 °С, выдерживали в течение 14 часов и размораживали в течение 3–5 часов при
комнатной температуре (+18–20 °С), затем после размораживания
перед гомогенизацией личинки трутней вторично замораживали в
течение 60 часов (–18 °С) и снова размораживали в течение 4,0–5,0
часов, затем проводили сушку под потоком теплого воздуха при
температуре 55 °С до полного исчезновения жидкости с поверхности личинок и досушивание в термостате при температуре 80°С
в течение 3,5–4,0 часов, при этом сухой материал гомогенизировали в течение 30–60 с., получили однородный порошок краснокоричневого цвета (рис. 6), с приятным специфическим запахом
и хорошо смачивающимся. Выбранный способ занимает меньше
времени при тех же результатах (опыт 2).
9.2.2.
Биохимический состав порошка из личинок трутней
Для того чтобы выяснить, какие вещества теряются при предлагаемом способе изготовления порошка, мы провели исследования состава сырья (10–12-дневные личинки трутней) и готового
порошка и сравнили. Чтобы определить биологическую ценность
изготовленного препарата, мы исследовали аминокислотный состав как нативного материала, так и готового порошка. Исследования проводили в НТЦ «Корма и обмен веществ», аминокислотный
состав определяли на аминокислотном анализаторе ААА-400 (Чехия), сырой протеин – на анализаторе SER-148, общей влажности
на анализаторе АД-4714А.
Аминокислоты являются незаменимыми структурными элементами белка органов и тканей животного, при этом отдельные
61
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
аминокислоты обладают специфическими функциями регуляторов
нормального состояния организма и его обмена веществ, и поэтому необходимы для образования «защитных» веществ (антител и
т. д.). Аминокислоты входят в состав выделений желез внутренней
и внешней секреции, в частности, гормонов, ферментов и других
регуляторов обмена веществ и содействуют регуляции осмотического давления и реактивных особенностей клеток и тканей, содействуют регулированию водного баланса организма, участвуют в
транспорте многочисленных групп веществ – липидов, гормонов,
минеральных веществ, витаминов, шлаков обмена веществ и т.д.
(Crasemann E., 1995; Архипов А. В., Топорова Л. В., 1984; Григорьев Н. Г. и др., 1989; Попов И. С. и др. 1975).
Аспарагиновая кислота – присутствует в головном мозге и
усиливает неврологическую активность, также помогает преобразовывать углеводы в мышечную энергию, при этом из нее
строятся иммуноглобулины и антитела, уменьшает уровень аммиака после физических нагрузок, помогает печени выводить из
организма остаточные продукты лекарств и химикатов, повышает работоспособность и играет важную роль в процессе усвоения
некоторых минералов: аспарагина кальция, аспарагина калия и
аспарагина магния.
Треонин – является важной составляющей многих белков, которые есть в организме. Он необходим для образования белка зубной
эмали, эластина и коллагена, при этом прием треонина приводит к
ослаблению мышечного тонуса, он также обезвреживает токсины,
помогает предотвратить накопление жира в печени и является важным компонентом коллагена, а вместе с цистеином, лизином, аланином и аспарагиновой кислотой укрепляет иммунитет. Треонин
необходим для здоровья вилочковой железы, которая в значительной степени определяет состояние иммунной системы организма.
Треонин также выступает в качестве липотропика вещества, которое контролирует накопление жира в печени, причем в случае
дефицита холина, другой аминокислоты, эта функция треонина
обретает большее значение.
Серин – необходим для нормального обмена жиров и жирных
кислот, роста мышечной ткани и поддержания нормального состояния иммунной системы.
Глютаминовая кислота – аминокислота, необходимая для профилатики потери мышечной массы , а также при лечении артритов и
62
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
заболеваний соединительной ткани. Глютаминовая кислота поддерживает нормальное кислотно-щелочное равновесие в организме.
Пролин – главный компонент коллагена, который в сочетании с витамином С способствует укреплению соединительной
ткани и заживлению ран, важен для восстановления и хорошего
функционирования хрящевых поверхностей суставов, укрепляет
сухожилия и связки, участвует в образование биологически важных пептидов. При окислении пролинового и лизинового радикалов внутри молекулы коллагена образуются две аминокислоты,
практически не встречающиеся в других белках - оксипролин и
оксилизин, отвечающие за прочность коллагена. Нарушение нормального течения процесса окисления приводит к образованию
рыхлого коллагена, что приводит к снижению прочности кожи,
связок, хрящевой ткани.
Глицин – синтезируемая аминокислота. Замедляет дегенерацию мышечной ткани, так как является источником креатина, который необходим для восстановления поврежденных тканей, для
центральной нервной системы. Адекватное количество глицина в
организме обеспечивает его энергией, понижает кислотность желудочной среды, усиливает рост костной ткани.
Аланин – присутствует в мышцах и является одной из нескольких аминокислот, превращающихся в глюкозу, которую организм
использует в качестве источника энергии, участвует в выработке
лимфоцитов, регулирует уровень сахара в крови и работу надпочечников, является основным компонентом соединительных тканей. Главный посредник в глюкозо–аланиновом цикле, позволяющий мышцам и другим тканям получать энергию из аминокислот,
укрепляет иммунную систему.
Валин, изолейцин и лейцин имеют особое значение для кожи,
мышц, костей и связок. Действуя вместе, эти аминокислоты защищают мышечную ткань от деструкции, являясь строительным материалом для синтеза белков костно-мышечного аппарата, а также
источником энергии, особенно необходимы в восстановительный
период после травм и операции.
Тирозин – хорошее средство для лечения депрессии и тревожности, важен для процессов метаболизма. Организм производит
его из другой аминокислоты – фенилаланина, как кислота – антидепрессант он полезен для снижения тревожности и повышения
общего тонуса. Эта аминокислота обладает умеренным антиокси63
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
дантным действием, связывает свободные радикалы (нестабильные молекулы), которые могут нанести вред клеткам и тканям.
Фенилаланин – незаменимая аминокислота, участвует в синтезе коллагена и соединительной ткани улучшает функционирование
кровеносной сети, способствует образованию инсулина.
Гистидин – незаменимая аминокислота. Способствует росту и
восстановлению тканей, входит в состав миелиновых оболочек, защищающих нервные клетки, необходим для образования красных
и белых клеток крови, защищает организм от воздействия радиации, способствует выведению тяжелых металлов, необходим для
поддержания иммунитета.
Лизин – незаменимая аминокислота. Входит в состав практически всех белков, необходим для нормального обмена азота и роста,
способствует усвоению кальция, участвует в создании антител,
гормонов, ферментов, формировании коллагена и восстановлении
тканей.
Аргинин – незаменимая аминокислота, важнейший компонент
обмена веществ мышечной ткани, способствует поддержанию
оптимального азотного баланса в организме, обладает способностью замедлять рост опухолей, стимулирует иммунную систему,
улучшает состояние кожи, участвует в восстановлении хрящевых
поверхностей суставов, укрепляет связки и сердечную мышцу.
Цистин – важная аминокислота, содержащая серу, при этом
цистин является мощным антиоксидантом, который печень использует для нейтрализации разрушительных свободных радикалов, укрепляет соединительные ткани и усиливает антиокислительные процессы в организме, способствует процессам заживления, стимулирует деятельность белых кровяных телец,
помогает уменьшить болевые ощущения при воспалениях,
очень важная кислота для кожи и волос, эта аминокислота необходима также для защиты от химических токсинов. Цистин
играет важную роль в ежедневной работе организма по восстановлению клеток печени.
Метионин – незаменимая аминокислота, необходим для нормализации функции печени, участвует в переработке жиров, уменьшает мышечную слабость, снижает остроту химической аллергии,
инактивирует свободные радикалы, участвует в синтезе нуклеиновых кислот, коллагена и многих других белков, предотвращает выпадение волос.
64
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Для испытания брали сырьё (12-дневные сырые личинки трутней) и готовый порошок из личинок трутней, полученный по способу, описанному в опыте 2. В таблице 15 приводится состав сырья
и готового порошка.
Таблица 15
Биохимический состав сырья и готового препарата
Показатель
Аминокислоты %
Влага (%)
Сырой протеин (%)
Сырой жир (%)
БЭВ (%)
Аспаргиновая к-та
Треонин
Серин
Глютаминовая к-та
Пролин
Глицин
Аланин
Валин
Изолейцин
Лейцин
Тирозин
Фенилаланин
Гистидин
Лизин
Аргинин
Цистин
Метионин
Личинки трутней сырые Готовый препарат
78,9
7,78
4,43
8,15
0,682
0,291
0,308
1,076
0,532
0,323
0,392
0,395
0,383
0,592
0,369
0,322
0,229
0,266
0,393
0,135
0,255
7,74
33,98
19,36
35,71
2,983
1,271
1,348
4,708
2,327
1,415
1,714
1,728
1,674
2,588
1,614
1,408
1,002
1,165
1,718
0,589
1,116
Установлено, что порошок содержит сырого протеина 33,98 %,
сырого жира 19,36 % биологических экстрактивных веществ (БЭВ)
35,71 %, аспаргиновой кислоты 2,98 %, треонина 1,27 %, серина
1,34 %, глютаминовой кислоты 4,70 %, пролина 2,32 %, глицина
1,41 %, аланина 1,71%, валина 1,72 %, изолейцина 1,67 %, тирозина 1,61 %, фенилаланина 1,40 %, гистидина 1 %, лизина 1,16 %,
65
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
аргинина 1,71 %, цистина 0,58 %, метеонина 1,11 %. То есть после
приготовления в готовом порошке потерь аминокислот и БЭВ не
выявлено, а концентрация их возросла в 4,37 раза (за счет снижения влажности).
Таким образом, в процессе приготовления в порошке по сравнению с сырьем количество сырого протеина, сырого жира, всех
аминокислот возросло более чем в 4 раза, он оказался и ценным
компонентом для скармливания животным, так как содержит заменимые (аспаргиговая кислота, серин, глютаминовая кислота,
пролин, глицин, аланин, тирозин, цистин) и незаменимые (лизин,
метионин, аргинин, треонин, валин, лейцин, изолейцин, гистидин,
фенилаланин) аминокислоты.
9.2.3.
Разработка препарата на основе порошка
из личинок трутней для лечения свиней
с ассоциативным течением балантидиоза
С целью получения порошка для лечения животных с ассоциативным течением балантидиоза и пастереллеза на основании
способа (опыт 2) получения порошка из личинок трутней для повышения резистентности организма животных брали порошок из
личинок трутней и в него дополнительно вносили порошки тилозина и диметридазола. Для составления наиболее оптимального
соотношения компонентов мы провели также четыре опыта:
Опыт 2.1. Брали порошок из личинок трутней и в него вносили
порошок тилозина и диметридазола при следующем соотношении
компонентов, г/кг :
порошок тилозина
0,050
порошок диметридазола
0,150
порошок из личинок трутней
остальное до 1 грамма
При введении поросятам данной прописи для создания терапевтической концентрации по тилозину и диметридазолу в организме
животных расходовалось много порошка из личинок трутней, а
при необходимой дозе порошка из личинок трутней не достигалась терапевтическая концентрация антибиотиков.
Опыт 2.2. Аналогично опыту 2.1, но при другом соотношении
компонентов, г/кг :
порошок тилозина
0,090
порошок диметридазола
0,200
порошок из личинок трутней
остальное до 1 грамма
66
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
При даче порошка в данном соотношении компонентов необходимые концентрации всех действующих веществ были достигнуты в нужных соотношениях. Ярко проявились все необходимые
терапевтические эффекты.
Опыт 2.3. Аналогично опыту 2.1, но при другом соотношении
компонентов, г/кг :
порошок тилозина
0,100
порошок диметридазола
0,225
порошок из личинок трутней
остальное до 1 грамма
При даче порошка необходимые концентрации всех действующих веществ были достигнуты в нужных соотношениях. Ярко
проявились все необходимые терапевтические эффекты
Опыт 2.4. Аналогично опыту 2.1, но при другом соотношении
компонентов, г/кг :
порошок тилозина
0,200
порошок диметридазола
0,300
порошок из личинок трутней
остальное до 1 грамма
При даче порошка необходимые концентрации всех действующих веществ были достигнуты в нужных соотношениях. Терапевтические эффекты по цифровым показателям проявились аналогично примерам 2 и 3, однако произошло увеличение себестоимости готового препарата – порошка.
Для дальнейшего использования нами был выбран рецепт из
опыта 2.2 из-за его наименьшей себестоимости.
Соотношения компонентов выбранного препарата (опыт 2.2):
порошок тилозина
0,090
порошок диметридазола
0,200
порошок из личинок трутней
остальное
9.2.4
Микробиологические исследования
биологического материала из личинок
трутней и порошка из него
Для определения безвредности изготовленного нами препарата мы провели экспертизу. Для исследования были отобраны
пробы: гомогенат из личинок трутней (сырьё для изготовления порошка из личинок трутней) и порошок из личинок трутней. Пробы были исследованы на наличие: сальмонелл, патогенной кишечной палочки, протей, энтероккоки, анаэробы, патогенные грибы,
pseudomonas aeruginosa и общая бактериальная обсемененность.
67
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Для определения общего количества микробных тел, энтеропатогенной кишечной палочки, сальмонелл, токсинообразующих
анаэробов исследования проводились согласно «Правил бактериологического исследования кормов» утвержденных главным управлением ветеринарии МСХ СССР от 10.06.75 г. Для посевов были
использованы следующие среды: Среда №1, МПА(мясопептонный
агар), Кода, Китт-Тароцци, Вильсон-Блера, Пептонная вода, Киллиана, Левина, XLT4, ЩПС (щелочно-полимиксиновая среда). Для
определения патогенных грибов использовали МУ по санитарномикологической оценке и улучшению качества кормов утв.
ГУВ МСХ СССР 25.02.1985 г. Для определения pseudomononas
aeruginosa МУ по лабораторным исследованиям на псевдомоноз
животных и птиц утв. ГУВ МСХ СССР № 432-3 от1988 г.
Исследования гомогената. Для исследования на сальмонеллы
проводили посев гомогената из личинок трутней в пептонную воду
для предварительного обогащения. Через 24 часа термостатирования при 37 °С проводили пересев на бактериологические чашки с
твердой дифференциально-диагностической средой Левина, XLT4
и основную среду обогащения Киллиана. Через 24 часа термостатирования при 37 °С из среды Киллиана проводили вторичный
посев на бактериологические чашки с твердой дифференциальнодиагностической средой Левина и XLT4. Через 48 часов характерного роста не наблюдалось.
Для исследования на энтеропатогенные типы кишечной палочки готовили серии разведений гомогената из личинок трутней в
стерильном физиологическом растворе от 1×102 – 1×106. Из каждого разведения проводили посев 1 мл в среду Кода. Через 24 часа
термостатирования при 37 °С изменений цвета среды, характеризующего наличие кишечной палочки не наблюдалось.
Для исследования на токсинообразующие анаэробы готовили
фильтрат из гомогената из личинок трутней и физиологического
раствора и проводили посев на среду Китта-Тароцци и ВильсонБлера. Через 24 часа почернения среды Вильсон-Блера и наличия
газа в среде Китт-Тароцци, характеризующие наличие анаэробной
микрофлоры не наблюдалось.
Для определения общего количества микробных клеток в стерильную пробирку помещали 1 г гомогената из личинок трутней,
добавляли 9 мл физиологического раствора и тщательно встряхивали. Из полученной взвеси готовили последующие разведения
от 1×102 – 1×106. После оседания взвешенных частиц из верхнего
68
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
слоя жидкости делали посевы. Для количественного учета микробного обсеменения в стерильные бактериологические чашки вносили по 1 мл каждого разведения и заливали 10–15 мл стерильного,
расплавленного и охлажденного до температуры 44–45 °С мясопептонного агара. Осторожно покачивая чашки, засеянный материал равномерно распределяли в агаре. После застывания среды
чашки помещали (вверх дном) в термостат при температуре 37 °С.
После 24–48-часового термостатирования проводили подсчет выросших колоний, только в чашках, где содержатся не более 300 колоний. Результаты, полученные при подсчете колоний, умножали
на разведения, суммировали и определяют количество микробов в
1 г корма. Общая бактериальная обсемененность составила 450000
микробных клеток.
Для исследования на энтерококки готовили серии разведений
гомогената из личинок трутней в стерильном физиологическом
растворе от 1×102 – 1×106. Из каждого разведения проводили посев 1мл в среду ЩПС. Через 24 часа термостатирования при 37°С
изменения цвета среды, характеризующего наличие энтерококков
не наблюдалось.
Для исследования на энтеропатогенный протей готовили серии
разведений гомогената из личинок трутней в стерильном физиологическом растворе от 1×102 – 1×106. Из каждого разведения проводили посев 1мл в МПА по методу Шукевича. Через 24 часа термостатирования при 37°С «ползучего» нежного роста, характеризующего наличия протея не наблюдалось (табл. 16).
Таблица 16
Микробиологические исследования гомогената из личинок трутней
НД на методы испытаний
Правила бактериологического исследования кормов.
Утв. ГУВ МСХ СССР
10.06.75 г.
Правила бактериологического исследования кормов.
Утв. ГУВ МСХ СССР
10.06.75 г.
Исследуемый
показатель
Патогенные микроорганизмы в том
числе сальмонеллы
в 50г. продукта
Патогенная кишечная палочка
Допустимые
уровни
Результаты исследования
Не допу- Не обнаскается
ружены
Не допу- Не обнаскается
ружены
69
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Продолжение
НД на методы испытаний
Методика индикации бактерий рода «Протеус» от
21.05.81 г.
Правила бактериологического исследования кормов.
Утв. ГУВ МСХ СССР
10.06.75 г.
Правила бактериологического исследования кормов. Утв. ГУВ МСХСССР
10.06.75 г.
Правила бактериологического исследования кормов.
Утв. ГУВ МСХ СССР
10.06.75 г.
Исследуемый
показатель
Допустимые
уровни
Результаты исследования
Протей
Не допу- Не обнаскается
ружены
Энтерококки
Не допу- Не обнаскается
ружены
Анаэробы
Не допу- Не обнаскается
ружены
Общая бактериаль- Не более
ная обсемененность 500000
микробных тел
в1г
Патогенные грибы Не допускается
МУ по санитарномикологической оценке
и улучшению качества кормов утв.ГУВ МСХ СССР
25.02.1985 г.
МУ по лабораторным исpseudomonas aerugi- Не допуследованиям на псевдомо- nosa
скается
ноз животных и птиц утв.
ГУВ МСХ СССР № 432-3
от1988 г.
450000
микробных тел
Не обнаружены
Не обнаружены
Как видно из таблицы, сырье, используемое для изготовления
порошка из личинок трутней, доброкачественное.
Исследования порошка из личинок трутней. Для исследования на сальмонеллы проводили посев 50 г порошка из личинок трутней в пептонную воду для предварительного обогащения. Через 24
часа термостатирования при 37 °С проводили пересев на бактериологические чашки с твердой дифференциально-диагностической
средой Левина, XLT4 и основную среду обогащения Киллиана. Через 24 часа термостатирования при 37 °С из среды Киллиана про70
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
водили вторичный посев на бактериологические чашки с твердой
дифференциально-диагностической средой Левина и XLT4. Через
48 часов характерного роста не наблюдалось.
Для исследования на энтеропатогенные типы кишечной палочки готовили серии разведений порошка из личинок трутней в стерильном физиологическом растворе от 1×102 – 1×106 Из каждого
разведения проводили посев на 1 мл в среду Кода. Через 24 часа
термостатирования при 37 °С изменений цвета среды, характеризующего наличие кишечной палочки не наблюдалось.
Для исследования на токсинообразующие анаэробы готовили фильтрат из порошка из личинок трутней и физиологического
раствора и проводили посев на среду Китта-Тароцци и ВильсонБлера. Через 24 часа почернения среды Вильсон-Блера и наличия
газа в среде Китт-Тароцци, характеризующие наличие анаэробной
микрофлоры не наблюдалось.
Для определения общего количества микробных клеток в стерильную пробирку помещали 1 г порошка из личинок трутней,
добавляли 9 мл физиологического раствора и тщательно встряхивали. Из полученной взвеси готовили последующие разведения
от 1×102 – 1×106. После оседания взвешенных частиц из верхнего
слоя жидкости делали посевы. Для количественного учета микробного обсеменения в стерильные бактериологические чашки вносили по 1 мл каждого разведения и заливали 10–15 мл стерильного,
расплавленного и охлажденного до температуры 44–45 °С мясопептонного агара. Осторожно покачивая чашки, засеянный материал равномерно распределяли в агаре. После застывания среды
чашки помещали (вверх дном) в термостат при температуре 37 °С.
После 24–48-часового термостатирования проводили подсчет выросших колоний, только в чашках, где содержатся не более 300 колоний. Результаты, полученные при подсчете колоний, умножали
на разведения, суммировали и определяют количество микробов в
1 г корма. Общая бактериальная обсемененность составила 420000
микробных клеток.
Для исследования на энтерококки готовили серии разведений
порошка из личинок трутней в стерильном физиологическом растворе от 1×102 – 1×106. Из каждого разведения проводили посев
1 мл в среду ЩПС. Через 24 часа термостатирования при 37 °С
изменения цвета среды, характеризующего наличие энтерококков
не наблюдалось.
71
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Для исследования на энтеропатогенный протей готовили серии
разведений порошка из личинок трутней в стерильном физиологическом растворе от 1×102 – 1×106. Из каждого разведения проводили посев 1мл в МПА по методу Шукевича. Через 24 часа термостатирования при 37°С «ползучего» нежного роста, характеризующего наличия протея не наблюдалось (табл. 17).
Таблица 17
Микробиологические исследования порошка из личинок трутней
НД на методы испытаний
Правила бактериологического исследования
кормов. Утв. ГУВ МСХ
СССР 10.06.75 г.
Исследуемый показатель
Допустимые Результаты
уровни
исследования
Патогенные
микроорганизмы, в том числе
сальмонеллы
в 50 г продукта
Не допускается
Не обнаружены
Правила бактериологиПатогенная кического исследования
шечная палочка
кормов. Утв. ГУВ МСХ
СССР 10.06.75 г.
Методика индикации бак- Протей
терий рода «Протеус» от
21.05.81 г.
Не допускается
Не обнаружены
Не допускается
Не обнаружены
Правила бактериологического исследования
кормов. Утв. ГУВ МСХ
СССР 10.06.75 г.
Правила бактериологического исследования
кормов. Утв. ГУВ МСХ
СССР 10.06.75 г.
Правила бактериологического исследования
кормов. Утв. ГУВ МСХ
СССР 10.06.75 г.
Энтерококки
Не допускается
Не обнаружены
Анаэробы
Не допускается
Не обнаружены
Общая бактериальная обсемененность
Не более
420000
500000
микробных
микробных тел
тел в 1 г.
Как видно из таблицы, порошок из личинок трутней доброкачественен в бактериальном отношении и может быть использован
для скармливания.
72
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
9.2.5.
Оценка общей токсичности порошка
из личинок трутней
Токсичность – один из важнейших факторов, определяющих
качество препаратов, достаточно информативный, дающий представление о безопасности и безвредности препаратов при их применении. Биологический критерий токсичности является одним из
основных в токсикологии. К числу наиболее объективных методов
определения токсичности относят биотестирование при помощи
чувствительных тест-организмов. Мы применили методику для
определения токсичности порошка из личинок трутней, где в качестве тест-объекта выступали инфузории Paramecian caudatum.
У этих инфузорий биохимические параметры близки к высшим
животным, что позволяет экстраполяцию результатов, полученных
при биотестировании с ними.
Этот метод определения общей токсичности растворов и водных
вытяжек основан на способности инфузорий реагировать на присутствие в водных вытяжках веществ, представляющих опасность
для их существования, и направленно передвигаться по градиенту
уменьшения концентраций этих веществ (хемотаксис), избегая их
негативного воздействия. В данном случае критерием токсического действия будет значительное различие в числе клеток инфузорий, находящихся в верхней зоне кюветы в контрольной пробе (не
содержащей токсических веществ), по сравнению с этим показателем, наблюдаемым в опытной пробе.
Мы определяли степень опасности биологически активного
препарата из преимагинальных фаз трутней. Сухой порошок из личинок трутней перед исследованием разводили дистиллированной
водой. Отбор проб проводили в соответствии с ГОСТ 17.4.3.01–83
(14). Параметры поведенческой реакции инфузорий определяли с
помощью прибора «Биотестер».
В кювету аппарата «Биотестер» вносили 2,0 см взвеси инфузорий
в рабочей концентрации, к ней добавляли 0,35 см3 5 %-ного раствора
ПВС, тщательно перемешивали, увлажняя стенки кюветы. Затем в
кювету 1 наслаивали 1,6 см3 раствора порошка из преимагинальных
фаз трутней на дистиллированной воде (1x10), не допуская перемешивания с нижним слоем. В контрольную кювету вместо исследуемой жидкости вносили 1,6 см3 дистиллированной воды.
Через 30 минут последовательно производили определение
концентрации инфузорий в верхней зоне кюветы в контрольной и
73
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
опытной пробе. Подготовленные кюветы последовательно помещали в кюветный модуль аппарата «Биотестер» и снимали показания прибора.
Оценку общей токсичности пробы порошка из преимагинальных
фаз трутней производили по относительной разнице количества
клеток в верхних зонах кювет в контрольной и анализируемой пробе. Индекс токсичности определяли по формуле:
Iср. контроль ~ Iср.опыт
_______________
,
Т =
Iср.контроль
где Iср.контроль, Iср.опыт – средние показания прибора для контрольных и анализируемых
проб соответственно; Т – индекс токсичности.
Полученные результаты представлены в таблице 18.
Таблица 18
Результаты определения общей токсичности порошка
из преимагинальных фаз трутней
№ пробы
Тип пробы
Средний показатель
Токсичность
1
2
Контроль
С водным экстрактом
89,25
87,5
Не токсична
Не токсична
Из данных таблицы видно, что пробы содержат безопасные
для инфузорий вещества, а значит, могут быть использованы для
скармливания животным.
9.2.6.
Испытание порошка из личинок трутней
на лабораторных крысах
Порошок из личинок трутней, полученный в опыте 2, был
испытан на лабораторных крысах семнадцати недельного возраста, подобранных по принципу аналогов в дозе 0,75 г/кг массы
тела. Препарат задавали крысам внутрь 2 раза в день в течение
12 суток. Животных взвешивали до и после опыта (табл. 19).
Исследовали гематологические показатели крыс после начала
опыта на 14 день (табл. 20). В качестве контроля использовали
группу животных, не получавших препарат. В крови определяли
количество эритроцитов, гемоглобин, тромбоцитов, лейкоцитов,
средний объем эритроцита.
74
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Таблица 19
Масса тела крыс при скармливании порошка из личинок трутней
Средние показатели массы
тела животных (г)
Кол-во
животных
в группе
Препарат
1 опыт
3
Порошок
из личинок
трутней
750
266,7±5,774 300±10,000
2 контроль
3
–
–
273,3±5,773 276,7±5,774
№ группы
Доза,
(мг/кг)
до опыта
после опыта
Таблица 20
Гематологические показатели у крыс при скармливании порошка
из личинок трутней
Гематологические показатели
Группа
опыт
контроль
Гемоглобин g/l
139,3±3,055
85,33±30,89
Эритроциты m/ul
7,19±0,5092
4,973±1,686
Гематокрит, %
41,77±2,098
38,45±0,7094
Лейкоциты k/ul
3,723±1,104
6,707±2,128
Среднее содержание гемоглобина
в эритроците
19,4±1,217
17,07±0,4041
Средний объем эритроцита
58,2±3,451
55,2±1,706
Тромбоциты
961,1±235,9
691,7±117,9
Анализируя результаты исследований, следует отметить, что в
опытной группе масса тела увеличилась на 13,7 %, а в контрольной лишь на 2,5%. Также в опытной группе по сравнению с контрольной возросло: количество гемоглобина на 37,5 %, количество
эритроцитов на 30,9 %, гематокрит на 9 %, среднее содержание
гемоглобина в эритрфоците на 9,6 %, средний объем эритроцита
на 5,2 %, количество тромбоцитов на 28,1 %.
Таким образом, порошок, полученный по разработанному нами
способу, способствует увеличению живой массы и улучшению гематологических показателей у крыс.
75
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
9.2.7.
Испытания препарата на основе порошка
из личинок трутней и антибиотиков для лечения
свиней с ассоциативным течением балантидиоза
и пастереллеза на лабораторных крысах
Порошок из личинок трутней и антимикробных компонентов, полученный в опыте 2.2, был испытан на лабораторных крысах
семнадцати недельного возраста, подобранных по принципу аналогов, в дозе 1 г/кг массы тела. Препарат задавали крысам внутрь
2 раза в день в течение 12 суток. Животных взвешивали до и после
опыта (табл. 21). Исследовали гематологические показатели крыс
после начала опыта на 14-й день. В качестве контроля использовали группу животных, получавших только тилозин и диметридазол
в дозе 0,09 г и 0,2 г. В крови определяли количество эритроцитов,
гемоглобин, тромбоцитов, лейкоцитов, средний объем эритроцита
(табл. 22).
Таблица 21
Масса тела крыс при скармливании порошка
из личинок трутней и антибиотиков
Кол-во животных в
группе (гол.)
Препарат, доза
(мг/кг)
Доза
(мг/кг)
Средние показатели массы
тела животных (г)
до опыта
после опыта
1 опыт
3
Препарат из личинок трутней,
тилозина и диметридазола
1000
297,7±10,02 300±9,165
2 контроль
3
Тилозин и диметридазол
90 и
200
№
группы
350±16,37
313±13,00
Таблица 22
Гематологические показатели у крыс при скармливании порошка
из личинок трутней и антибиотиков
Гематологические показатели
Гемоглобин g/l
Эритроциты m/ul
Гематокрит, %
76
Группа
контроль
опыт
149,3±20,23
4,927±1,605
38,1±0,954
154±5
4
37,93±0,4731
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Продолжение
Гематологические показатели
Лейкоциты k\ul
Среднее содержание гемоглобина
в эритроците
Средний объем эритроцита
Группа
контроль
опыт
4,68±0,3304
4,373±2,052
33,03±12,5
38,5±1,25
54,63±2,743
55,3±1,323
Анализируя полученные данные, следует отметить, что масса в
опытной группе осталась в тех же пределах, а в контроле снизилась
на 10 %. При сравнении данных гематологии в опытной группе
уровень гемоглобина на 3,3 % больше, чем в контроле; остальные
параметры можно считать непоказательными. Руководствуясь этими данными, мы сделали вывод, что препарат из личинок трутней
снижает негативное действие антибиотиков, что позволяет избежать снижения массы тела животных.
Полученный порошок по сравнению с другими известными
примерами имеет следующие преимущества:
– способствует повышению резистентности организма,
– имеет невысокую стоимость,
– прост в изготовлении,
– снижает потери живой массы.
9.2.8.
Изучение эффективности препарата из личинок
трутней и антибиотиков при балантидиозе
свиней в ассоциации с пастереллезом
При получении доброкачественной животноводческой продукции одной из проблем успешной работы животноводческой отрасли
является наличие инфекционных и инвазионных заболеваний продуктивных животных, связанных с понижением иммунного статуса
их организма. Одними из таких заболеваний являются балантидиоз
и пастереллез свиней, которые повсеместно распространены в нашей стране. Разработанный нами порошок содержит в своем составе природные иммуномодуляторы, повышающие устойчивость
организма к различным воздействиям, в том числе могут способствовать повышению сопротивляемости к заболеваниям инвазионной этиологии и нивелировать отрицательное влияние антибиотиков (тилозин и диметридазол), которые входят в состав порошка.
Мы испытали его эффективность при балантидиозе свиней.
77
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Для лечения свиней при балантидиозе в смешанной инвазии
в ветеринарной практике используют сульфаниламиды, а также
препараты, содержащие мышьяк и метронидазол и др. Однако эффективность этих препаратов невысока, так как в организме животных при данном заболевании происходят глубокие морфобиологические изменения, требующие применения патогенетической
терапии. Поэтому в своих опытах мы использовали специально
созданный нами препарат на основе порошка из личинок трутней,
тилозина и диметридазола.
Опыты проводили на свиньях крупной белой породы, больных
балантидиозом при смешанном течении с пастереллезом.
В опыте использовали 10 поросят 1,5–2-месячного возраста, живой массой 15–18 кг, у которых наблюдали следующие клинические признаки: угнетение, отсутствие аппетита и исхудание, понос,
кровоизлияния и цианоз видимых слизистых оболочек, посинение
кожи. При исследовании нативных мазков из свежих теплых фекалий от больных поросят в поле зрения микроскопа были обнаружены от двух до пяти движущихся балантидий. В сыворотке крови
больных поросят обнаружены антитела к пастереллезу. Больных
поросят разделили на две группы по 5 голов.
Пяти животным первой группы препарат из личинок трутней и
антибиотиков задавали внутрь 2 раза в день в течение 12 суток в
дозе 1г на кг массы тела групповым методом в смеси с кормом.
Поросятам контрольной группы (второй) задавали только тилозин и диметридазол в дозе 0,09 г и 0,2 г соответственно в течение
12 дней.
Все время опыта животные находились в одном помещении, в
одинаковых условиях содержания, но в разных станках, получали
один и тот же рацион кормления.
Учет результатов проводили до начала дачи препаратов и на 3,
6, 9, 12 день после начала опыта: исследовали живую массу поросят, нативные мазки фекалий и клиническое состояние животных
обеих групп. Результаты представлены в таблице 23.
Анализ полученных данных показал, что у поросят первой
группы с 12-го дня применения препарата из личинок трутней и
антибиотиков – балантидий в мазках фекалий не обнаруживали.
У животных контрольной группы балантидий обнаруживали на
протяжении всего опыта. Средняя масса поросят первой группы
увеличилась к окончанию опыта в среднем на 1,3 кг, а в контрольной группе снизилась на 0,9 кг.
78
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Таблица 23
Эффективность препарата из личинок трутней и антибиотиков
при ассоциированном балантидиозе свиней
Показатели
Результаты исследований через..., дней
До опыта
3
6
9
12
Первая группа (n = 5)
Кол-во
1,4±1,14
1,4±1,342 0,2±0,4472
балантидий 5,4±1,817 3,2±1,483
в фекалиях
0
0
0
0
0
Пало, гол
Средняя
16,6±0,3391 16,6±0,3362 17±0,3161 17,4±0,3675 17,9±0,2916
масса, кг
Контрольная группа (n = 5)
Кол-во
балантидий 4,4±1,817 3,25±1,258 2,75±0,9574 1,5±0,7071 1±1,414
в фекалиях
0
1
0
2
0
Пало, гол
Средняя
17,1±0,3741 16,98±0,4349 16,68±0,1707 16,5±0,2829 16,2±0,1403
масса, кг
Таким образом, можно сделать вывод, что скармливание препарата на основе порошка из личинок трутней и антибиотиков (тилозин и диметридазол), поросятам 1,5–2-месячного возраста в дозе
1 г/кг живой массы тела, в течение 12 дней эффективно при ассоциативном течении балантидиоза и пастереллеза, и способствует
увеличению живой массы на 2,2 кг по сравнению с контролем.
9.3. Технология производства кормовой добавки
из побочных продуктов: личинок трутней
и подмора пчел
Другой задачей нашей работы являлось создание безопасной
кормовой добавки, в качестве основы в которых мы использовали
продукты пчеловодства: подмор и личинки трутней.
Описание свойств личинок трутней пчел было дано в предыдущем разделе. Подмор пчёл содержит: белок, хитин, меланины, воск,
тяжелые углеводороды, эфиры, спирты, витамины. Самым ценным
79
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
веществом подмора является хитозан – фракция хитина, которая
способствует снижению высоких уровней холестерина в крови,
предотвращает атеросклероз и его грозные последствия; механически очищает кишечник, нормализует его функцию, уменьшает
всасывание токсинов, что делает возможной профилактику заболеваний желудочно-кишечного тракта; действует как профилактическое средство при риске развития диабета. Хитозан способен
связывать и выводить радионуклиды и соли тяжелых металлов;
он активизирует заживление ожоговой и раневой поверхности без
образования рубцов, при нанесении на рану обладает кровоостанавливающим и обезболивающим эффектом (Немцов С. В., Хисматуллин Р. Г., Хисматуллин М. Р., Лариков В. В., Варламов В. П.,
Смирнова В. В., 2007).
Но прежде чем приступить к разработке кормовой добавки,
мы испытали различные способы получения и сохранения личинок пчел в условиях пасеки, а также сбора и сохранения «подмора» пчел, отработали приемы предварительной подготовки
биологического материала к дальнейшей работе.
9.3.1.
Способы получения и сохранения
физических свойств личинок трутней
и подмора пчёл в условиях пасеки
Перед началом работы все инструменты, кюветы и емкости
для сбора материала предварительно мыли в воде с добавлением
нейтрального моющего средства для мытья посуды и обрабатывали в течение 15 минут водными растворами КМп04 в разведении
1:1000.
С целью получения биологического материала соты с трутневым расплодом извлекали из семьи, стряхивали с них пчел. Затем
с помощью ножа для распечатки сотов с них срезали выпуклые
крышечки и различными способами собирали личинки пчел.
I способ. С помощью пчеловодческой вилки поддевали личинки пчел и вытаскивали их из ячеек. Затем снимали их с вилки, проводя по краю приготовленного заранее кювета. При этом для сбора
100 личинок расходовали 20 секунд и 25–30 личинок оставались
на месте. Кроме того, часть личинок разрывались, так как приходилось несколько раз задевать вилку из-за того, что не все личинки
сразу выходили из ячеек.
II способ. Рамку с раскрытым трутневым расплодом слегка
постукивали в течение 2–3 секунд о край кювета или специаль80
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
ного приспособления (кювета с «П»-образной рамкой) и выбивали различные фазы трутней в кювету. За 2–3 секунды практически все фазы имеющиеся на рамке попадали в кювету (200–300
экземпляров). Пять-десять личинок из 100 все же оставались в
ячейках.
III способ. Рамку с расплодом держали в левой руке, опирая
ее на кювет, а правой рукой собирали фазы трутней с помощью
автомобильного пылесоса со специальной насадкой и пластмассовой ёмкостью или выбивали различные фазы трутней в кювет.
В ячейках не оставался расплод и за 20 секунд собирали 200–300
экземпляров. В дальнейшем весь материал с помощью ножа или
ложки помещали в пластмассовые емкости по 50–500 мл. С целью
сохранения полученного биологического материала в условиях
летней жары и отсутствия холодильных камер на пасеках добавляли 0,5 % карболовую кислоту из расчета одна капля на 1 мл или
40 % раствором спирта (одна часть спирта на девять частей сбора)
и транспортировали.
Анализируя полученные результаты, следует отметить, что II и
III способ получения личинок пчел наиболее эффективны и могут
быть использованы для получения этого биологического материала в условиях пасеки. Вторым компонентом кормовой добавки был
подмор пчёл. «Подмор» – это погибшие пчелы, собранные в разные сезоны года. Мы в своих исследованиях использовали подмор,
собранный в весенний период, то есть пчелы, погибшие в зимний
период времени.
Подмор очищали от механических примесей, плесени, воска,
прополиса. Высушивали, собирая его в матерчатые сумки и хранили на открытом воздухе или собирали в целлофановые мешочки и
хранили в холодильнике при температуре –4 °С. Собранный материал измельчали на мясорубке с размером сетки 3 мм и.использовали
в дальнейшей работе. При этом было отмечено, что лучше сохраняется подмор при хранении в морозилке бытового холодильника,
так как в высохшем подморе пчел развивались все фазы восковой
моли, которые уничтожали подмор.
9.3.2.
Разработка состава кормовой добавки
Привезенный с пасеки материал из личинок трутней в лаборатории подвергался дальнейшей обработке: его измельчали на
81
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
мясорубке, в гомогенизаторе шуттелировали со стеклянным стерильным песком или обрабатывали ультразвуком.
I способ. Личинки измельчали на мясорубке до консистенции
густой сметаны (с включениями до 3 мм в диаметре). Продолжительность измельчения 1 кг материала – 10 минут. В качестве стабилизирующей среды добавляли 5 %-ную глюкозу из расчета: одна
часть материала и девять частей 5 %-ной глюкозы.
II способ. Материал обрабатывали вначале на мясорубке, а затем на гомогенезаторе в течение 7 минут, при скорости 2 тыс. об/
мин до сметанообразной консистенции (с включениями 1–1,5 мм в
диаметре). Продолжительность обработки – 45 минут.
III способ. Материал пропускали через мясорубку обрабатывали на гомогенезаторе MPW 303 в течение 12 минут при 3 тыс. об/
мин. и шуттеллировали с нейтральным стеклянным песком в 0,5
литровых колбах течение 3 часов. Для предотвращения развития
микрофлоры на 1 литр материала добавляли 30 мг ампицилина.
Затем отстаивали в холодильнике в течение 1 часа. Надосадочную
жидкость сливали в другую посуду. Продолжительность обработки материала 6 часов. Материал имел жидкую сметанообразную
консистенцию (с включениями от 0,8 до 1 мм в диаметре).
IV способ. Личинки пчел, привезенные с пасек замораживали
при температуре – 4–5°С в течение 12–24 часов, затем размораживали в течение 5–10 мин до + 40 °С, гомогенизировали на MPW
303 в течение пяти минут при 3 тыс. об/мин и подвергали обработке ультразвуком на УЗДН-1 при максимальной мощности 400 Вт,
силе тока 0,7А и частоте 35 с экспозицией пять минут. В качестве
стабилизирующей среды использовали 5%-ный раствор глюкозы
(одна часть гомогената и девять частей глюкозы).
На изготовление биологического материала из трутней уходило
от 12 до 24 часов. Биологический материал был сметанообразной
консистенции без видимых включений, то есть размер частиц был
меньше 0,8 мм.
Таким образом, при обработке полученного материала различными способами установлено, что последний, IV способ, обработки способствует получению биологического материала более
мелкой дисперсности, чем предыдущие и наиболее приемлем для
дальнейшей работы, поэтому нами использовался в работе IV способ обработки полученного материала.
82
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
9.3.3.
Разработка состава и способов приготовления
кормовой добавки из личинок трутней
и подмора пчел
Проводя патентный поиск и анализируя данные литературных источников, мы отметили, что ученые крайне редко описывали применение продуктов пчеловодства в качестве лекарственных
средств и биологически активных добавок для животных.
И. И. Тетерев и другие использовали 20 %-ный спиртовый экстракт прополиса; С. А. Позов и другие применяли прополис для
лечения бронхопневмонии. Использование трутневого расплода
пчел для подобных целей не описывается, хотя их состав уникален
(Прохода И. А., 2006). Поэтому целью нашей работы являлось создание эффективного безотходного способа приготовления кормовой добавки из личинок трутней и подмора пчел для ветеринарии.
При разработке новой кормовой добавки нами были подобраны аналоги и прототипы. При этом было выявлено, что известен
способ получения лечебно-профилактического продукта из перги,
включающий помещение сырья в герметичную камеру, снижение
давления в ней до 100 мм.рт.ст. с последующей обработкой сырья
в камере с помощью СВЧ-поля. При этом СВЧ-нагрев проводят таким образом, чтобы температура в камере не превышала 45 °С до
получения целевого продукта с влажностью не более 5 %. Полученный продукт имеет повышенное содержание витаминов, незаменимых аминокислот, микроэлементов, а также способность при
длительном хранении сохранять свои целебные свойства.
Недостатком данного способа является его высокая стоимость,
сложность получения.
Известен способ фракционирования прополиса, включающий
экстракцию прополиса, при этом в качестве исходного материала
используют измельченный прополис или запрополисованные холстинки. Экстракцию проводят в две стадии: экстрагируют сжиженной углекислотой при давлении 6,0–7,0 МПа в течение 3–5 ч при
температуре 22–26 °С с выделением углекислотного экстракта; на
второй стадии углекислотный экстракт обрабатывают 70–94 %-ным
раствором этилового спирта при температуре 25–60 °С в течение
5–10 мин с получением спиртового экстракта. Далее, из экстракта
выделяют спирторастворимую и нерастворимую в спирте части.
Недостатком данного способа является сложность получения,
высокая стоимость.
83
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому
положительному эффекту и принятый нами за прототип является
способ получения кормовой добавки из личинок трутней и подмора пчел, включающий сбор личинок трутней и подмора пчел и их
гомогенизацию (Лазарян Д. С., 1999).
Недостатком данного способа является то, что кормовая добавка не выдерживает длительного срока хранения.
В связи с этим, для получения препарата из личинок трутней и
подмора пчел нами было проведено три опыта.
Опыт № 1. Собирали личинки трутней различного возраста с помощью вакуумного насоса из открытых специальным ножом сотов
с трутневым расплодом и очищали подмор пчел от примесей, затем смешивали их в соотношении 1:1 и гомогенизировали, причем
перед гомогенизацией сбор смешивали с 40° спиртом в соотношении 10:1. Замораживали при температуре –4 °С в течение 72 часов,
затем размораживали при комнатной температуре с последующим
добавлением 20 весовых частей искусственного желудочного сока
(3 %-ный пепсин и 1 %-ная соляная кислота), перемешивали, пробы закупоривали. Смесь инкубировали в термостате, в герметичной
таре, при температуре 39 °С в течение 48 часов, при этом перемешивая через 24 часа. Затем полученную смесь после окончания переваривания (определяется визуально от взвеси отходов производства
остается тонкий коричневый осадок) процеживали через 6 слоев
марли или сито и охлаждали. Полученную смесь доводили до рН 7,0
раствором 0,1N соляной кислоты или с помощью 0,1N гидроксида
натрия. Для консервации добавляли ацетилсалициловую кислоту, из
расчета одна таблетка на один литр кормовой добавки. Наличие посторонних примесей определяли, просматривая препараты на свету.
Кормовая добавка была непрозрачной, с осадком.
Опыт № 2. Все технологические операции проводили аналогично опыту № 1, но к одной весовой части соединенных в равных объемах (1:1) личинок трутней и подмора пчел прибавляли
десять весовых частей искусственного сока. Все перемешивали,
смесь инкубировали в сушильном шкафу в герметичной таре вначале при температуре 120 °С в течение одного часа, а затем при
температуре 39 °С в течение 24 часов периодически помешивая.
В полученной смеси рН доводили до 7,0 0,1N соляной кислотой
или 0,1N гидроксидом натрия. Смесь процеживали через шесть
слоев марли или сито; автоклавировали при температуре 120 °С в
84
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
течение 45 минут, разливали в стерильных условиях по флаконам,
укупоривали и использовали в качестве кормовой добавки. По вышеуказанной технологии кормовая добавка была прозрачной, с небольшим осадком.
Опыт № 3. проводили аналогично опытам № 1 и 2, но с добавлением одной весовой части искусственного желудочного сока и
перемешивали, пробы закупоривали. Смесь инкубировали в термостате, в герметичной таре при температуре 120 °С один час, а
затем при 39 °С в течение 48 часов, при этом перемешивали её через 24 часа. В полученной смеси рН доводили до 7,0 0,1N соляной
кислотой или 0,1 N гидроксидом натрия, После окончания «переваривания» смесь процеживали через шесть слоев марли или сито
и охлаждали, затем автоклавировали при температуре течение 45
минут, разливали в стерильных условиях по флаконам, укупоривали. Кормовая добавка была мутной с осадком.
Таким образом, по физическим свойствам кормовая добавка,
полученная во втором опыте, оказалась мелкодисперсной с небольшим осадком. В дальнейшем образцы, полученные в трёх опытах,
были обозначены, как образец № 1, 2, 3. Все полученные образцы
были проверены на стерильность и на безвредность.
9.3.4.
Микробиологические и токсикологические
исследования кормовой добавки из личинок
трутней и подмора пчёл
Стерильность каждого образца определяли согласно ГОСТ
28085 «Препараты биологические. Метод бактериологического
контроля стерильности». Высевы образцов кормовой добавки, полученных в трех опытах, проводили в стерильном боксе в ламинарном шкафу «ENVAIR».
На средах МПБ, МППБ под вазелиновым маслом, МПА и агаре
Сабуро с помощью стерильной пипетки и груши осуществляли высев образцов кормовых добавок. Сначала набирали 0,3 мл образца
в пипетку и вносили в пробирки с МПБ, МППБ (под масло), МПА
и агар Сабуро, образец осторожно вынимали и закрывали ватными
пробками, так чтобы их не намочить. При высеве на агары добавку
засевали таким образом, чтобы она наслаивалась на скошенную
поверхность агара.
Все высевы с МПБ, МППБ и МПА помещали в термостат при
температуре 37–38 °С, а агар Сабуро оставляли при комнатной
85
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
температуре, учет на стерильность проводили через 7, 14, 21, 28
дней (табл. 24).
МПА
Сабуро
МПБ
МППБ
МПА
Сабуро
МПБ
МППБ
МПА
Сабуро
МПБ
МППБ
МПА
Сабуро
28
МПБ
1
2
3
Рост микрофлоры, дней
14
21
7
МПБ
№ опыта
Таблица 24
Результат культивирования препаратов на МПБ, МППБ,
МПА и агаре Сабуро
+
–
–
+
–
–
+
–
–
–
–
–
+
–
–
+
–
–
+
–
–
–
–
–
+
–
–
+
–
–
+
–
–
–
–
–
+
–
–
+
–
–
+
–
–
–
–
–
Примечание: МПБ – мясо-пептонный бульон; МППБ – мясопептонный еночный бульон, МПА – мясо-пептонный агар, Сабуро – Агар
Сабуро. наличие роста, «–» – отсутствие роста.
Рост посторонней микрофлоры определяли визуально. В образце №1 уже на 1 сутки был отмечен рост посторонней микрофлоры
на МПБ, МППБ и МПА. При этом на МПБ и МППБ отмечали помутнение среды, в то время как бульоны образцов № 2 и 3 остались
прозрачными, а при визуальном осмотре образца № 1 на МПА
были отмечены округлые мелкие колонии белого цвета.
Для более точного выяснения стерильности образцов провели
микроскопирование «проросших» сред. Для этого на чистое обезжиренное покровное стекло наносили одну каплю высева образца
на МПБ, сушили над пламенем спиртовки и окрашивали по Граму,
на окрашенное высушенное стекло нанесли иммерсионное масло.
Ту же операцию проводили и с высевом на МППБ, МПА.
При микроскопировании мазков на микроскопе «БИОЛАМ
Ломо» при имении 90 в образце № 1 обнаружили колонии
Streptococcus и Clostridium, а в образцах № 2 и 3 посторонней
микрофлоры не обнаружили. Таким образом, образцы № 2 и 3,
которые изготавливались из личинок трутней и подмора пчёл
(1:1) при переваривании искусственным желудочным соком в
условиях сушильного шкафа (при температуре 120°С 1 час) и
термостата (при температуре 39°С) 24 часа и 48 часов можно считать стерильным.
86
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
9.3.5.
Оценка общей токсичности
и безвредности кормовой добавки
Нами определялась степень опасности кормовой добавки из
личинок трутней и подмора пчел.
Методика, применяемая нами, основана на определении острой
токсичности нашего препарата по реакции инфузорий, на внешнее
воздействие с исследованием в качестве тест-объекта инфузорий
Paramecium caudatum.
Определение степени опасности биологически активной кормовой добавки осуществляли по методике, описанной в разделе 9.2.5.
Добавку перед исследованием разводили дистиллированной водой.
Отбор проб проводили в соответствии с ГОСТ 17.4.3.01–83.
Оценку общей токсичности пробы добавки из личинок трутней
и подмора пчел проводили по относительной разнице количества
клеток в верхних зонах кюветов в контрольной и анализируемой
пробе. Индекс токсичности определяли по формуле:
Iср. контроль – Iср. опыт
Т = ________________,
Iср. контроль
где Т – индекс токсичности, Iср. контроль и Iср. опыт – средние показания прибора для
контрольных и анализируемых проб, соответственно.
Полученные результаты представлены в таблице 25.
Таблица 25
Степень токсичности проб кормовой добавки
№
00
01
02
03
Тип пробы
Контроль
Опыт №1
Опыт №2
Опыт №3
Средние показатели
89,42
163,76
68,34
73,47
Токсичность, Т
Не токсична
допустимая
допустимая
допустимая
Из данных таблицы 25 следует, что пробы содержат безопасные, но привлекательные для инфузорий вещества, и значение активности инфузорий в одной опытной пробе несколько превышает
значение контроля. В тоже время, при формальном расчете получены отрицательные значения индекса токсичности Т, что свиде87
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
тельствует об отсутствии токсичности всех проб, а значения могут
быть оценены как нулевые. Таким образом, опытные пробы кормовых добавок из личинок трутней и подмора пчел не токсичны по
отношению к инфузориям Paramecium caudatum при определении
на приборе серии «Биотестер».
Кроме этого, токсичность наших препаратов мы определяли на
белых мышах. Для этого животным однократно вводили внутрь
исследуемые образцы в различных дозах: 50, 200, 1000 и 5000 мг/
кг, а в качестве контроля использовали физиологический раствор в
тех же дозах (табл. 26).
Таблица 26
Определение токсичности кормовых добавок на белых мышах
Дозы, мл/кг
Образец 1
50
200
1000
5000
Образец 2
50
200
1000
5000
Образец 3
50
200
1000
5000
Физ. р–р
50
200
1000
5000
Сутки
7 8
1
2
3
4
5
6
9
10
11
12 13
14
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
–
В результате случаев гибели животных не было установлено,
значит, испытанные препараты не токсичны для белых мышей.
Безвредность препаратов проверяли на лабораторных животных. Для этого белым лабораторным мышам подкожно вводили
88
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
0,5 мл кормовой добавки и вели наблюдение за их общим состоянием в течение двух недель. На месте введения препарата образца
№ 1 у животных наблюдалось воспаление уже на следующий день,
а у мышей, которым вводили образцы № 2, 3 видимых патологических отклонений не обнаружено. Исходя из этого, образцы № 2 и
№ 3 можно считать безвредными (табл. 27).
Таблица 27
Показатели качества кормовых добавок
№ образца
1
2
3
Стерильность
+
–
–
Безвредность
+
–
–
Токсичность
–
–
–
Анализируя результаты исследований, нами установлено, что
опытные препараты № 2 и 3 стерильны, не токсичны и безвредны.
Для дальнейших исследований и испытаний использовали образец
№ 2, так как он имеет наибольшую растворимость, стерильный,
безвредный, со сроком годности до 1 года.
Полученная кормовая добавка – это жидкость (в виде суспензии) коричневого цвета с небольшим осадком, легко растворяющаяся при встряхивании, безвредная, стерильная и не токсичная.
В дальнейшем кормовая добавка из личинок трутней и подмора
пчёл, основанная на способе приготовления образца № 2 получила
название «БиоХит».
9.3.6.
Химический состав кормовой добавки
Нами был изучен химический состав кормовой добавки. Результаты состава «БиоХит» представлены в таблице 28.
Таблица 28
Основные показатели химического состава
кормовой добавки «Биохит»
Показатель
Вода, г
Сухое вещество, г
Сырой жир, г
Содержание
975
25
13
89
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Продолжение
Показатель
Сырой протеин, г
Аминокислоты (общая сумма), мг
В т. ч.
незаменимые:
фенилаланин
лизин
лейцин
аргинин
валин
изолейцин
треонин
гистидин
метионин
заменимые:
глутаминовая
аланин
аспаргиновая
тирозин
глицин
серии
Сахар,г
Минеральные вещества (мг):
кальций
селен
медь
марганец
цинк
Витамины (мг): Е
90
Содержание
8,9
6960
900
600
580
550
490
320
260
220
30
680
640
580
490
430
190
2,6
277
30,0
2,7
2,65
2,0
15,0
В5
13,0
В12
1,0
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Влажность кормовой добавки составляет 97,5 %, доля сухого
вещества – 2,5 %. Сухое вещество «БиоХит» содержит сырого
жира – 1,30 %, Сахаров – 0,26 %, протеина – 0,89 %.
Биологическая ценность протеина кормовой добавки, особенно для свиней, состоит в том, что он содержит 9 из 10 незаменимых аминокислот: фенилаланин, лизин, лейцин, аргинин, валин,
изолейцин, треонин, гистидин, метионин. Сумма незаменимых
аминокислот составляет 3950 мг или 57 % от общего их количества. Свиньи – моногастричные животные. Они не синтезируют в
организме вышеназванные аминокислоты, поэтому должны получать их в достаточном количестве вместе с кормом. Сумма заменимых аминокислот – 3010 мг, или 43 % от общей суммы всех
аминокислот.
Качественная характеристика минерального состава кормовой
добавки показала, что в ней содержатся: кальций, фосфор, натрий,
калий, сера, селен, медь, марганец, цинк, железо. Существенная
доля минерального состава приходится на кальций, селен, медь,
марганец, цинк содержание, которых, приведено в таблице 28.
Минеральные соли присутствуют в составе тканей животного
организма, крови, тканевых жидкостях, костной ткани, ферментах,
гормонах. Они принимают участие в регенерации тканей кожного
покрова, в регуляции мышечного тонуса (Кальницкий В. Д., 1985;
Георгиевский В. И. и др., 1979; Лапшин С. А., Кальницкий В. Д.
и др., 1988; Злыднев Н. З. и др., 2000, 2003; Трухачев В. И., 2006).
Важнейшей функцией кальция в организме является его связь с
белком и участие в образовании костной ткани. Он участвует в регуляции проницаемости клеток и в свертывании крови. Ионы кальция регулируют мышечную и нервную деятельность, они оказывают активное действие на аденезинтрифосфатазу мышц. Кальций
активно участвует в поддержании кислотно-щелочного равновесия
в организме. Марганец в организме животных принимает активное
участие в окислительно-восстановительных процессах, тканевом
дыхании, костеобразовании, оказывает влияние на рост, размножение, кроветворение, функцию эндокринных органов и противодействует жировой дегенерации печени (Макарцев Н. Г., 1999, 2007).
Цинк играет важную роль в реализации гормональных функций
организма, обладает ранозаживляющим действием, снимает отечность, покраснение кожи (Прохода И. А., 2006).
Селен обладает высокой биохимической активностью и по
своему влиянию на организм близок к витамину Е. Селен воздей91
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
ствует на процессы тканевого дыхания, регулируя скорость течения окислительно-восстановительных реакций, повышает иммунобиологическую реактивность организма, регулирует усвоение и
расход витаминов А, С, Е и К. Он также влияет на белковый обмен,
в частности на обмен серосодержащих аминокислот.
Медь участвует в гемопоэзе и способствует образованию гемоглобина в присутствии железа. Она необходима для нормального
развития скелета и повышения мясной продуктивности. Участвуя
в ряде ферментативных процессов, медь значительно влияет на
обмен в организме углеводов, липидов, белков и минеральных
веществ. Медь оказывает влияние на активность половых гормонов, обмен витаминов и функциональное состояние эндокринной
и нервной систем (Баканов В. Н., Менькин В. К., 1989; Богданов Г. А., 1990).
Витамины – группа специфических действующих высокоактивных органических веществ, преимущественно растительного
происхождения, которые оказывают регулирующее влияние на
процессы метаболизма и физиологические функции организма.
Так, кормовая добавка «БиоХит» содержит 15 мг/кг витамина Е
(токоферола). Токоферол участвует в разнообразных биологических процессах. Он обладает антиокислительными свойствами,
способствует усвоению и сохранению витамина А и каротина в организме животного. Защищает от окисления легкоокисляющиеся
вещества в корме, пищеварительном тракте и участвует в процессах эндогенного обмена веществ, препятствуя образованию ядовитых продуктов пероксидации ненасыщенных жирных кислот.
Необходим для функции размножения, способствует сохранению
целостности мембран клеток, нормализует процессы клеточного
дыхания (Емелина Н. Т., Крылова B. C., Петухова Е. А., 1970; Зинченко Л. И., Горелова И. Е., 1980). В состав кормовой добавки входят такие водорастворимые витамины как В5 и В12. Витамин В5 (РР,
никотиновая лота) является частью комплексной ферментной системой, осуществляющей передачу водорода в живой клетке. Она
регулирует окислительно-восстановительные процессы, обмен
углеводов, жиров, контролирует нервную, сердечно-сосудистую
и пищеварительную системы. Витамин В12 (цианкобаламин) участвует в многообразных жизненных процессах – кроветворении,
синтезе нуклеиновых кислот и аминокислот, в обмене жира и углеводов, образовании холина и стимулировании биосинтеза метио92
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
нина в организме. Витамин В12 является незаменимым фактором
роста и репродукции животных (Макарцев Н. Г., 1999, 2007; Хеннинг А., 1976; Двинская Л. М., 1989).
Таким образом, «БиоХит» является ценной кормовой добавкой
для молодняка свиней, так как содержит незаменимые аминокислоты (фенилаланин, лизин, лейцин, аргинин, валин, изолейцин,
треонин, гистидин, метионин) .и заменимые аминокислоты (глутаминовая, аспаргиновая, аланин, тирозин, глицин, серии), макро- и
микроэлементы (кальций, селен, медь, марганец, цинк) и витамины (Е, В5, В12).
9.3.7.
Испытание кормовой добавки
на лабораторных крысах
Прежде чем использовать кормовую добавку на сельскохозяйственных животных, необходимо было испытать её на лабораторных животных, которые более чувствительны к различному
роду отравлениям, инфекциям, инвазиям. Они также являются моделью для изучения гематологического, биохимического и иммунологического статуса животных при применении биологически
активных и других препаратов. В связи с этим, в данном разделе
работы мы изучаем действие кормовой добавки на организм лабораторных крыс, так как в естественных условиях крысы переболевают балантидиозом.
Схема испытания кормовой добавки «БиоХит» представлена в
таблице 29.
Таблица 29
Схема испытания кормовой добавки «БиоХит»
на лабораторных крысах, n = 12
Группа
Характер кормления
I опытная
II опытная
ОР + 1 мл/гол/сут
ОР + 1 мл/гол/сут + соевое «молоко»
ОР (зерносмесь, морковь, свекла, тыква, молоко,
отварное мясо)
Примечание: основной рацион.
Для опыта нами было отобрано 36 лабораторных крыс в возрасте двух месяцев и сформировано три группы аналогов (Викторов П. И., 1983, 1991). Животные контрольной группы получали
93
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
зерносмесь, корнеклубнеплоды и бахчевые (морковь, свеклу, тыкву) и корма животного происхождения (молоко, отварное мясо).
Крысы первой опытной группы, кроме основного рациона получали кормовую добавку из подмора пчел и личинок трутней, из
расчета 1 мл на голову в сутки.
Животным второй опытной группы скармливали выше названную кормовую добавку, а воду заменяли соевым «молоком». Всем
подопытным животным был обеспечен свободный доступ к питьевой воде. К соевому «молоку» приучали в течение пяти дней. Продолжительность опыта оставляла 40 дней.
Через каждые 20 дней проводили индивидуальное взвешивание
животных, результаты которого показаны в таблице 30.
Таблица 30
Живая масса лабораторных крыс, n = 12
Взвешивание
До начала опыта
Через 20 дней
Через 40 дней
1-опытная
187,34±2,15
200,84±1,13*
227,08±1,75***
Живая масса, г
II -опытная
контрольная
187,61±2,43
211,84±1,49***
234,78±1,24***
187,94±1,73
196,12±1,79
203,49*1,42
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01, ***Р<0,001
Анализируя полученные данные видно, что живая масса крыс
первой и второй опытных групп в возрасте 80 дней превышала
живую массу крыс контрольной группы на 4,72 г и 15,72 г или на
2,4 % (Р< 0,05) и 7,4 % Р<0,ОО1), а в возрасте 100 дней на 23,54 г и
31,29 г или 10,4 % ( Р<0,001) и 3,3 % (Р<0,001) соответственно.
Для изучения влияния кормовой добавки «БиоХит» нами были
исследованы гематологические показатели лабораторных крыс.
Для получения крови у лабораторных крыс прибегали к пункции сердца. Для этого у обездвиженного животного выстригали
шерсть в области предполагаемого укола и дезинфицировали кожу.
Пальпаторно определяли место конечного толчка сердца. На 1 см
краниальней от установленной точки, отступив на 1-2 мм от левого края грудины, делали укол, держа иглу вертикально (Западнюк И. П., Западнюк В. И., Захария Е. А., 1962).
Результаты гематологических показателей лабораторных крыс
приведены в таблице 31.
94
6,96±0,15
Эритроциты, 10 /л
10,07±0,31**
Эритроциты, 10 /л
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01, ***Р<0,001
11,03*0,17
118,37±1,95**
Гемоглобин, г/л
Лейкоциты, 109/л
9,60±0,18
Лейкоциты, 109/л
Через 40 дней
112,70*1,93
Гемоглобин, г/л
Через 20 дней
8,70±0,27
9
Лейкоциты, 10 /л
5,30±0,14
До опыта
Эритроциты, 10 /л
1-опытная
90,80±0,56
Взятие крови
Гемоглобин, г/л
Показатель
11,32±0,15
10,86±0,32***
119,53±1,40***
9,70±0,23
7,20±0,14
115,40±1,83**
8,90±0,21
5,60±0,10
91,70±0,80
II-опытная
Группа
Гематологические показатели лабораторных крыс
11,21±0,28
8,41 ±0,18
111,32±0,51
9,80±0,22
6,51±0,21
108,40±0,96
8,40±0,23
5,40±0,11
91,40±0,82
контрольная
Таблица 31
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
95
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Из данных таблицы видно, что количество гемоглобина у животных первой и второй опытных групп в возрасте 100 дней достоверно превышало контрольных на 7,05 и 8,21 г/л или на 6,33 %
(Р< 0,01) и 7 % (Р<0,001) ,а количество эритроцитов – на 1,66 и
2,45.1012/л или 16,5 % (Р< 0,01) и 22,6 % (Р<0,001) соответственно.
Совокупное повышение гемоглобина и эритроцитов говорит о стимуляции эритропоэза.
Применение кормовой добавки «БиоХит» оказало влияние на
количество белка и белковых фракций в сыворотке крови лабораторных крыс (табл. 32).
Увеличение содержание альбуминов указывает на усиление
белок-синтетической и антитоксической функции печени. Они
участвуют в регуляции водно-солевого обмена между кровью и
окружающими тканями и регулируют метаболические процессы в
организме. Повышение в организме животных γ-глобулинов говорит о повышении иммунитета в организме животных.
В возрасте 80 дней количество общего белка у животных первой и второй опытных групп превышала контрольных на 10,68
и 14,67 г/л или на 18,3 и 23,5 % (Р<0,001), альбуминов – 9,09 и
11,93 г/л или 33 и 39,3 % (Р<0,001). Содержание γ-глобулинов в сыворотке крови крыс первой и второй опытных групп было больше,
чем у животных контрольной группы на 1,5 и 2,7 г/л или на 14,7 %
(Р<0,001) и 23,7 % (Р< 0,05).
К возрасту 100 дней тенденция сохранилась. Количество общего белка у лабораторных крыс первой и второй опытных групп
достоверно превышало количество общего белка у животных контрольной группы на 9,9 и 12,73 г/л или 14,3 и 17,6 % (Р<0,001),
количество альбуминов – на 7,12 и 9,26 г/л или 23,2 и 28,2 %
(Р<0,001) соответственно. Количество глобулинов увеличилось за
счет фракции γ-глобулинов. Так, содержание γ-глобулинов в сыворотке крови крыс первой и второй опытных групп достоверно превышало количество γ-глобулинов у животных контрольной группы
на 3,21 и 3,72 г/л или на 20,5 и 23,0 % (Р<0,001).
Таким образом, результаты наших исследований показали, что
скармливание кормовой добавки «БиоХит» лабораторным крысам
в течение 30 дней, в дозе 1 мл на голову в сутки, способствовало
увеличению живой массы животных на 10,4 %, повышению количества эритроцитов на 16,5 %, гемоглобина на 6 %, общего белка
на 14,3 %, альбуминов – 23,2 %, γ-глобулинов на 20,5 %.
96
9,20± 0,22
5,80 ±0,17
9,29±0,25
5,54 ±0,09
11,38± 0,65
11,87± 0,41
16,14 ±0,41
11,24±0,33
15,63 ±0,89
32,81± 0,31
72,20 ±0,51
11,78± 0,53
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины
γ-глобулины
Через 40 дней
30,67±0,55
Альбумины, г/л
11,40±0,37
10,20 ±0,27
69,32 ±0,68
10,12 ±0,39
10,29 ±0,31
Общий белок, г/л
10,54 ±0,30
10,42 ±0,30
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины
γ-глобулины
62,47 ±0,87
Альбумины, г/л
30,41 ±0,34
58,48 ±0,85
27,57 ±0,40
Общий белок, г/л
Через 20 дней
9,43 ±0,22
9,78 ±0,15
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины
γ-глобулины
18,17 ±0,36
42,60 ±0,66
18,61 ±0,22
До опыта
Группа
II-опытная
Альбумины, г/л
1-опытная
43,22±0,85
Взятие крови
Общий белок, г/л
Показатель
12,42±0,22
12,18± 0,41
11,32 ±0,37
23,55 ±0,79
59,47 ±0,72
8,70± 0,32
10,24±0,35
10,38 ±0,17
18,48 ±0,52
47,80 ±0,74
5,38 ±0,19
9,62 ±0,16
9,92 ±0,26
18,00 ±0,26
42,92 ±0,92
контрольная
Таблица 32
Содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови подопытных белых крыс, n = 5
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
97
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
9.3.8.
Испытание кормовой добавки
из побочных продуктов пчеловодства
при профилактике балантидиоза свиней
Для испытания эффективности разработанной кормовой добавки при профилактике балантидиоза свиней нами проводились
опыты на молодняке свиней крупной белой породы на СТФ ООО
«Агро-Смета» Георгиевского района Ставропольского края, неблагополучного по балантидиозу свиней.
Для опыта было отобрано 63 поросенка в возрасте 22–24 дня и по
принципу аналогов сформировано три группы животных. Поросята
контрольной группы получали основной рацион, сбалансированный
по всем питательным веществам. В рацион входило молоко свиноматки, цельное молоко, обрат, поджаренный ячмень, престартерный
комбикорм. В кормушках для поросят постоянно находился поджаренный ячмень, древесный уголь, мел. Один раз в неделю скармливали блоки дернины без кормушки. С одиннадцатого дня жизни поросятам скармливали пророщенное зерно ячменя, пшеницы (5–20
г/гол в сутки) – как легкодоступный источник витаминов А, Е, С и
группы В, как стимулятор аппетита, хороший источник сахаров.
На одну энергетическую кормовую единицу в дополнительных кормушках приходилось: переваримого протеина – 130–150 г,
кальция – 7–8 г, фосфора – 5–6 г, поваренной соли – 0,3 % от сухого
вещества рациона, сырой клетчатки – 3,5–4,0 % от сухого вещества. Жира приходилось на живую массу до 6 кг – 11,4 % от сухого
вещества рациона, до 6–12 кг – 9,1 % и до 12–20 кг – 5,8 %. Молодняк свиней опытных групп дополнительно к основному рациону
получал добавку «БиоХит»: I группы – 0,5 мл и II группы – 1,0 мл
в расчете на 1 кг живой массы в сутки с питьевой водой, за 23 дня
до отъема и 7 дней после отъема от свиноматки.
Схема опыта по скармливанию молодняку свиней кормовой добавки «БиоХит» представлена в таблице 33.
Таблица 33
Схема испытания кормовой добавки «Биохит» на поросятах, n = 21
Группа
Характер кормления
I опытная
ОР + 0,5 мл/кг живой массы КД «Биохит»
II опытная
ОР + 1 мл/кг живой массы КД «Биохит»
Контрольная
ОР (согласно схемы подкормки)
Примечание: ОР – основной рацион, КД – кормовая добавка.
98
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Все подопытные животные находились в одном корпусе, у одного оператора. Продолжительность опыта составила 42 дня.
В ходе опыта проводились копрологические исследования у
всех животных, на наличие балантидий методом нативного мазка
до опыта и через 14, 28, 42 дня. Для этого пробы свежевыделенных
фекалий у поросят помещали на предметное стекло, смешивали с
равным количеством теплого физиологического раствора и накрывали покровным стеклом. Мазок просматривали при малом увеличении микроскопа 7x8. Результаты представлены в таблице 34.
Таблица 34
Результаты копрологического исследования поросят на балантидиоз
Кол-во балантидий, через дней
цисты
Вегет.
Пало
Вгет.
Заболело
цисты
42
Вегет.
28
цисты
14
Вегет.
До опыта
цисты
Группы
I опытная
7
0
7
0
6
0
7
0
0
0
II опытная
8
0
8
0
7
0
8
0
0
0
Контрольная
7
0
7
8
7
12
7
18
21
4
В результате исследований было установлено, что до начала опыта все поросята являлись носителями балантидий, так как
были заражены от подсосных свиноматок. Было обнаружено 7–8
цист балантидий в поле зрения микроскопа исследуемых образцов,
через 14 дней после начала опыта в контрольной группе появились
вегетативные формы балантидий (рис. 16).
Через 28 дней после скармливания кормовой добавки в опытных группах количество балантидий осталось прежним, при этом
отсутствовали вегетативные формы возбудителя, в то время как
у животных контрольной группы количество вегетативных форм
увеличилось. К концу опыта (через 42) у животных опытных групп
отсутствовали вегетативные формы балантидий, животные балантидиозом не заболели, а у животных контрольной группы тенденция увеличения вегетативных форм сохранялась, при этом в поле
зрения микроскопа наблюдались и цисты балантидий.
99
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Рисунок 16. Вегетативная форма Balantidia coli, увеличение 7х8
При копрологическом исследовании свиноматок было обнаружено 10–15 как вегетативных форм, так и цист в поле зрения.
Явных клинических признаков у животных не наблюдалось. Температура тела была в пределах верхних границы нормы, аппетит
сохранялся, поросята были подвижные, активные.
На СТФ ООО «Агро-Смета», в других корпусах, в это же время проводилось лечение поросят трихополом (метранидазолом) с
кормом, из расчета 350 г на тонну корма два раза в день в течение
трех дней. Действие препарата оказалось малоэффективным, и он
быстро выводился из организма. На 3-й день состояние животных
улучшалось, в фекалиях уменьшалось количество балантидий. Однако через 7–10 дней после применения трихопола обнаруживались признаки балантидиоза, а количество балантидий в фекалиях
вновь увеличивалось.
Таким образом, кормовая добавка «БиоХит», скармливаемая
опытным поросятам в течение 30 дней в дозе 0,5 и 1 мл является эффективным профилактическим средством при балантидиозе
свиней.
9.3.9.
Изучение влияния добавки «БиоХит»
на изменение живой массы поросят
при профилактике балантидиоза
Одним из показателей, характеризующих эффективность использования кормовых добавок, является динамика живой массы.
100
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Во время опыта через каждые две недели проводилось индивидуальное взвешивание животных. Среднесуточный прирост устанавливали расчетным путем. Результаты индивидуального взвешивания представлены в таблице 35.
Скармливание добавки «БиоХит» молодняку свиней способствовало увеличению энергии роста животных. В возрасте 65 дней
живая масса подсвинков первой опытной группы составила 22,97
кг, что выше чем у животных контрольной группы на 3,97 кг или
на 17,3 % (Р < 0,001). У животных второй опытной группы превышение живой массы по сравнению с контрольной составило 1,60
кг или 7,8 % (Р< 0,001).
За весь опытный период наибольший абсолютный прирост
живой массы составил у подсвинков первой и второй опытных
групп – 16,37 и 13,95 кг, что выше чем у животных контрольной
группы на 4,04 и 1,62 кг или 24,68 и 11,60 % (Р<0,001).
Среднесуточный прирост живой массы у молодняка свиней
первой и второй опытных групп был выше, чем у животных
контрольной группы на 96,19 и 38,57 г или на 24,68 % и 11,60 %
(Р< 0,001).
Таким образом, испытуемая кормовая добавка значительно увеличивает энергию роста поросят. Живая масса молодняка свиней
опытных групп превышала массу животных в контроле на 24,7 %
и 11,6 %.
9.3.10. Гематологические показатели поросят
при скармливании кормовой добавки
Кровь соединяет химические процессы различных частей
тела в целостную систему. Как внутренняя среда она осуществляет связь всех органов и тканей, создавая необходимый режим их
существования. В организме животных кровь выполняет транспортную роль (транспорт кислорода к тканям и углекислого газа
от тканей к легким, транспорт питательных веществ и удаление
из тканей конечных продуктов обмена); регуляторную (поддерживает постоянство рН и осмотического давления, доставляет к
тканям гормоны); защитную (ее антитела и лейкоциты, связывая
возбудителей болезней и продукты их жизнедеятельности, предохраняют организм от заболевания). Кровь способна свертываться,
защищая организм от кровопотерь при повреждении сосудов (Чечеткин А. В., 1982).
101
102
Через 28 дней
Через 42 дня
Живая масса, кг
Среднесуточный прирост, г
Живая масса, кг
Среднесуточный прирост, г
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01, ***Р<0,001
За весь период (42 дня)
Абсолютный прирост, кг
Среднесуточный прирост, г
Через 14 дней
До опыта
Взвешивание
Живая масса, кг
Среднесуточный прирост, г
Живая масса, кг
Показатель
16,37±0,91***
389,76±23,4***
22,97±0,14***
447,90±26,9***
16,70±0,94***
407,10±24,4***
11,0±0,46***
314,29±18,9***
6,60±0,05
1-опытная
9,70±0,42 216,43±13,0
6,67±0,04
контрольная
Таблица 35
13,95±0,77***
12,33±0,68 293,57±17,6
332,14±19,9***
20,60±0,10***
19,00±0,20 335,70±20,1
378,60±22,7***
15,30±0,96***
14,30±0,84 328,60±19,7
350,00±21,0***
10,40±0,53***
267,86±16,2***
6,65±0,03
П-опытная
Группа
Изменение живой массы и среднесуточного прироста молодняка свиней, n = 21
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Кровь у поросят брали из краевой вены уха в стерильные пробирки до начала опыта и через 14, 28 и 42 дня от начала скармливания добавки.
Результаты исследований гематологических показателей животных представлены в таблице 36.
При анализе данных таблицы установлено, что количество гемоглобина и эритроцитов в опытных группах превышало контроль
в течение всего опытного периода. Так, содержание гемоглобина у
животных в возрасте 65 дней первой и второй опытных групп превышало контроль на 8,37 и 6,53 г/л или на 7,9 и 6,3 % (Р<0,001). Количество эритроцитов на 1,83 1012/л и 1,03 млн/мкл или на 23,1 %
(Р< 0,001) и 14,5 % (Р< 0,01) соответственно.
Это говорит об улучшении газообмена, увеличении снабжения
организма кислородом, об усилении клеточной защиты организма
и повышении его устойчивости к заболеваниям.
Таким образом, образом, при скармливании кормовой добавки
из личинок трутней и подмора пчёл, у животных опытных групп
увеличивается количество эритроцитов на 23,1 и 14,5%, а гемоглобина – на 7,9 и 6,3 % по сравнению с контролем.
9.3.11. Биохимические и иммунологические показатели
крови поросят при скармливании кормовой
добавки из личинок трутней и подмора пчёл
При изучении обмена веществ отдельно рассматривают белковый, углеводный, жировой обмены с тем, чтобы лучше проследить за превращениями этих веществ в организме, так как обменные процессы взаимосвязаны между собой (Дымко Е.Ф., 1986).
Обмен белков является центральным звеном среди всех биохимических процессов, лежащих в основе жизни. Все другие виды
обмена – углеводный, липидный, нуклеиновый и минеральный
обеспечивают метаболизм белков, особенно биосинтез специфических белков (Чечеткин А. В., 1982).
Белки крови выполняют многие функции: поддерживают постоянство онкотического давления, рН крови, уровень катионов
крови, играют важную роль в образовании иммунитета, комплексов с углеводами, липидами, гормонами и др. веществами (Кондрахин И. П., 1985). При нарушении белкового обмена нарушается
функциональное состояние в первую очередь печени, что характеризуется изменением биосинтеза в ней мочевины, белка и остаточного азота (Васильева Е. А., 1974).
103
104
6,52±0,12 **
Эритроциты, 1012 /л
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01, ***Р<0,001
Лейкоциты, 109/л
Эритроциты, 10 /л
8,7±0,34
7,9±0,21***
105,67±0,95***
Гемоглобин, г/л
12
7,20±0,12
Лейкоциты, 10 /л
9
Через 42 дня
7,23±0,10***
Эритроциты, 10 /л
8,6±0,82
7,10±0,19**
103,83±1,03***
7,30±0,16
6,87±0,15***
99,33±1,02**
102,23±1,31**
Гемоглобин, г/л
12
5,02±0,68
5,12±0,33
6,12±0,12*
95,24±2,61*
4,93±0,15
5,88±0,09
88,86±0,44
II-опытная
Группа
Лейкоциты, 10 /л
9
Через 28 дней
99,22±2,40**
Гемоглобин, г/л
Через 14 дней
5,05±0,35
9
Лейкоциты, 10 /л
5,86±0,12
До опыта
Эритроциты, 10 /л
I-опытная
88,82±1,19
12
Взятие крови
Гемоглобин, г/л
Показатель
Гематологические показатели молодняка свиней, п = 5
9,0±1,16
6,07±0,15
97,30±0,41
7,48±0,52
5,87±0,11
90,53±1,93
5,08±0,54
5,70±0,13
87,64±1,86
4,94±0,51
5,82±0,08
88,24±2,14
контрольная
Таблица 36
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
При изучении влияния кормовой добавки на белок и белковые
фракции сыворотки крови подопытных поросят получили следующие данные (табл. 37).
Количество общего белка у животных в опытных группах
(табл 37) превышало количество общего белка у животных контрольной группы на 11,10 и 8,22 г/л (Р<0,01) или на 15,4 % и 11,9 %
(Р<0,001) соответственно. Причем животные первой опытной
группы имели наибольший уровень общего белка, по сравнению с
животными других групп, в течение всего опытного периода.
Кроме того, включение в рацион препарата оказало влияние
и на соотношение белковых фракций в сыворотке крови животных. К концу опыта содержание альбуминов в крови поросят
первой и второй опытных групп превышало таковой показатель
у животных контрольной группы на 5,14 и 3,02 г/л или на 16,1 и
10,2 % (Р< 0,001), а увеличение глобулинов происходило за счет
γ-глобулиновой фракции на 9,51 и 8,63 г/л или 44,4 и 42,0 %
(Р < 0,001) соответственно. Уменьшилось содержание α-глобулинов
на 2,36 и 2,31 г/л или 24,9 и 24,2 % (Р<0,001), β-глобулинов – на
1,19 и 1,12 г/л или 12,8 и 12,0 %.
Таким образом, при даче кормовой добавки «БиоХит» в указанных дозах повышается неспецифическая резистентность организма
животных (γ-глобулины – иммунные белки). Повышается уровень
гуморального иммунитета: так, уровень бактерицидной активности в опытных группах превышал этот показатель в контрольной
группе на 9,0 % (Р< 0,001) и 4,6 % (Р< 0,05),а лизоцимной активности – на 8,1% (Р< 0,001) и 5,7% (Р< 0,01) соответственно.
105
106
Через 42 дня
Через 28 дней
Через 14 дней
До опыта
Взятие крови
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01, ***Р<0,001
Общий белок, г/л
Альбумины, г/л
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины
γ-глобулины
Общий белок, г/л
Альбумины, г/л
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины
γ-глобулины
Общий белок, г/л
Альбумины, г/л
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины
γ-глобулины
Общий белок, г/л
Альбумины, г/л
Глобулины, г/л: α-глобулины
β-глобулины,
γ-глобулины
Показатель
46,62±1,28
20,30±0,26
8,52±0,24
8,20±0,23
9,60±0,10
54,58±1,27***
25,10±0,26***
8,72±0,09
8,50±0,33
12,26±0,33***
61,32±0,45***
26,28±0,45***
8,84±0,16
8,91±0,21
17,29±0,30***
72,04±0,73***
31,86±0,19***
9,48±0,23***
9,27±0,28
21,43±0,17***
I-опытная
46,40±0,20
20,54±0,24
8,34±0,22
7,98±0,23
9,54±0,13
53,04±0,40***
24,28±0,60**
8,78±0,14
8,40±0,10
11,58±0,30***
55,94±0,32***
24,16±0,26***
8,92±0,17
8,82±0,15
14,04±0,22***
69,16±0,27**
29,74±0,23***
9,53±0,19***
9,34±0,08
20,55±0,27***
Группа
II-опытная
46,38±0,19
20,42±0,14
8,34±0,26
7,94±0,25
9,68±0,09
47,86±0,22
21,10±0,20
8,84±0,12
8,28±0,27
9,64±0,22
50,94±0,41
22,34±0,18
9,24±0,14
9,14±0,20
10,22±0,25
60,94±1,67
26,72±0,40
11,84±0,21
10,46±0,24
11,92±0,31
контрольная
Таблица 37
Содержание белка и белковых фракций в сыворотке крови молодняка свиней п = 5
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Выявлено также положительное влияние добавки на клеточные
факторы защиты организма – фагоцитарную активность (табл. 38).
В возрасте 65 дней у поросят опытных групп фагоцитарная активность нейтрофилов превышала фагоцитарную активность у животных контрольной группы на 5,0 % (Р < 0,01) и 3,1 % (Р < 0,05)
соответственно.
В плазме крови всегда содержится целый ряд конечных и промежуточных продуктов обмена белков. Эти вещества не осаждаются вместе с белками и остаются в растворенном состоянии после
осаждения последних. Суммарный азот этих веществ называется
остаточным. Одним из веществ, составляющих остаточный азот,
является мочевина. Это главный компонент остаточного азота.
При нарушении выделительной функции почек, когда повышается
общее содержание остаточного азота, доля мочевины в нем возрастает до 90–95 % (Нечеткий А. В., 1982).
Для характеристики углеводного обмена у поросят определяли
содержание глюкозы в сыворотке крови. Глюкоза является одним из
компонентов этого обмена, который всегда присутствует в крови и
других органах в определенном количестве, а количественное изменение ее содержания в крови указывает на состояние углеводного
обмена (Вишняков С. И., 1983). Глюкоза – главный источник энергии организма. На ее долю приходится более 90 % всех низкомолекулярных углеводов (Кондрахин И. П., 1985). Углеводы выполняют
не только энергетическую функцию, но и входят в состав многих
важных биологически активных структур. Известно, что многие
аминокислоты образуются из продуктов превращения углеводного
компонента. Углеводы входят в различные соединения, придавая им
реактивную специфичность (Нечеткий А. В., 1982).
Важная биологическая роль и у липидов. Они являются важнейшими структурно-функциональными соединениями. Молекулы сложных липидов обладают своеобразными физикохимическими свойствами, которые делают их универсальным
материалом для образования различных клеточных и субклеточных мембран. Изменение состава липидов влечет за собой сдвиг
в активности мембранно-связанных ферментов, а это в свою очередь, может вызвать глубокие изменения всего клеточного метаболизма (Прохорова М. И., 1982). Для выявления нарушений липидного обмена нами исследовалось содержание общих липидов
и холестерина.
107
108
Взятие крови
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01, ***Р<0,001
Бактерицидная активность, %
Лизоцимная активность, %
До опыта
Фагоцитарная активность нейтрофилов, %
Бактерицидная активность, %
Лизоцимная активность, %
Через 14 дней
Фагоцитарная активность нейтрофилов, %
Бактерицидная активность, %
Лизоцимная активность, %
Через 28 дней
Фагоцитарная активность нейтрофилов, %
Бактерицидная активность, %
Лизоцимная активность, %
Через 42 дня
Фагоцитарная активность нейтрофилов, %
Показатель
46,56±0,38
34,90±0,63
25,73±0,26
54,10±0,89***
42,32±1,39**
32,43±0,07***
58,10±0,30***
45,40±1,27**
33,83±0,17**
62,16±1,28***
46,48±0,95***
34,83±0,71**
I-опытная
46,88±0,44
34,75±0,33
25,70±0,21
49,68±0,38***
38,96±1,38*
29,00±0,58*
55,05±0,51*
42,50±1,40*
31,73*0,39*
57,70±1,50*
44,10±0,99**
33,00±0,66*
II-опытная
Группа
Показатели неспецифической резистентности молодняка свиней, п = 5
46,72±0,25
35,03±0,59
25,67±0,37
47,32±0,25
35,14±0,61
26,90±0,26
52,05±0,96
38,28±0,59
29,00±0,76
53,12±0,80
38,36±0,74
29,88±0,75
контрольная
Таблица 38
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
При скармливании кормовой добавки «БиоХит» в опытных
группах (табл. 39) увеличилось количество общих липидов на 7,4
и 4,5 г/л или на 11,0 % (Р < 0,01) и 6,7 % (Р < 0,05); глюкозы на 0,8
и 0,77 ммоль/л или на 19,0 и 18,5 % (Р < 0,01); мочевины – 0,74
и 1,34 ммоль/л или на 28,3 (Р < 0,01) и 15,0 % (Р < 0,05), а также
холестерина на 0,96 и 0,8 ммоль/л или на 17,2 и 14,8 % (Р < 0,01)
соответственно, что может свидетельствовать об улучшении функции углеводного и липидного обменов.
Таблица 39
Биохимические показатели крови молодняка свиней, п = 5
Показатель
Взятие
крови
Общие липиды, г/л
Глюкоза, ммоль/л
Мочевина, ммоль/л
Холестерин, ммоль/л
Общие липиды, г/л
Глюкоза, ммоль/л
Мочевина, ммоль/л
Холестерин, ммоль/л
Общие липиды, г/л
Глюкоза, ммоль/л
Мочевина, ммоль/л
Холестерин, ммоль/л
Общие липиды, г/л
Глюкоза, ммоль/л
Мочевина, ммоль/л
Холестерин, ммоль/л
До
опыта
Через
14
дней
Через
28
дней
Через
42 дня
Группа
I-опытная
II-опытная
контрольная
54,22±0,53
56,36±1,23
57,62±1,43
2,87±0,21
2,70±0,09
2,75±0,11
2, 46±0,07
3,92±0,10
61,78±0,43**
3,48±0,09**
3,34±0,09*
5,08±0,11**
66,32±1,85*
3,72±0,09**
3,64±0,19*
5,30±0,10**
70,06±1,02**
4,20±0,13**
4,74±0,23**
5,58±0,26**
2,64±0,09
2,80±0,13
3,84±0,07
3,82±0,06
60,94±0,49* 58,68±0,69
3,35±0,10* 3,05±0,07
3,40±0,07** 2,90±0,13
4,86±0,09** 4,34±0,12
64,28±1,20* 60,17±1,24
3,66±0,12* 3,26±0,10
3,72±0,20* 3,10±0,11
5,14±0,09* 4,54±0,19
67,16±1,49* 62,66±1,09
4,17±0,12** 3,40±0,15
4,0±0,21*
3,40±0,14
5,42±0,07** 4,62±0,16
Примечание: *Р< 0,05, **Р< 0,01
Анализируя полученные результаты, следует отметить, что при
скармливании кормовой добавки из личинок трутней и подмора
пчёл в дозах 0,5 и 1,0 мл в течение 30 дней при профилактике балантидиоза свиней повышаются биохимические показатели опыт109
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
ных поросят: содержание общего белка на 15,4 и 11,9 %, альбуминов на 16,1 и 10,2 %, γ-глобулинов – на 44,4 и 42,0 % соответственно; липидов на 11,0 и 6,7 %, глюкозы на 19,0 и 18,5 %, мочевины
на 28,3 и 15,0 %, а так же холестерина на 17,2 и 14,8 %. Кроме
того, улучшились показатели неспецифической резистентности у
поросят: бактерицидная активность увеличилась на 9,0 и 4,6 %,
лизоцимная активность на 8,1 и 5,7 %, а фагоцитарная активность
нейтрофилов на 5,0 и 3,1 %.
Таким образом, совокупность полученных данных позволяют
сделать вывод, что кормовая добавка «БиоХит» является эффективым профилаткическим средством при балантидиозе свиней,
улучшает обменные процессы, клеточную защиту организма, гуморальный иммунитет, повышает неспецифическую резистентность организма и энергию роста.
9.3.12. Экономическая эффективность использования
кормовой добавки «БиоХит»
при балантидиозе свиней
На основании научно-хозяйственного опыта нами был проведен расчет экономической эффективности применения кормовой
добавки «БиоХит» из личинок трутней и подмора пчёл при профилактике балантидиоза свиней (табл. 40).
Таблица 40
Экономическая эффективность применения кормовой добавки
«БиоХит» при балантидиозе свиней (цены 2007 года)
Показатель
1. Количество животных, гол:
на начало опыта
на конец опыта
2. Продолжительность опыта,
дней
3. Живая масса, кг:
на начало опыта
на конец опыта
4. Абсолютный прирост живой
массы 1 гол, кг
110
I-опытная
Группа
II-опытная
контроль
21
21
21
21
21
17
42
42
42
6,60±0,05
22,97±1,14
6,65±0,03 6,67±0,04
20,60±1,10 19,00±1,20
16,37±0,91
13,95±0,77 12,33±0,68
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Продолжение
I-опытная
Группа
II-опытная
контроль
5. Сохранность поросят, %
100,00
100,00
81,00
6. Себестоимость 1 кг прироста
жив. массы, руб.
29,03
34,06
47,61
7. Дополнительные затраты на
кормовую добавку, руб.
2,92
5,85
–
8. Затраты на выращивание 1 кг
свинины, руб.
31,95
39,91
47,61
9. Цена реализации
1 кг свинины, руб.
42,87
42,87
42,87
10. Прибыль (+), убыток (–), руб.
+ 10,92
+2,96
–4,74
11. Экономическая эффективность вет. мероприятий на руб.
затрат, руб.
48,50
23,20
0
Показатель
Из данных таблицы 40 видно, что в расчете на одну голову
молодняка свиней за период подсоса (42 дня) в первой опытной
группе получен прирост живой массы 16,37 кг, что выше, чем во
второй опытной и контрольной соответственно на 2,42 и 4,04 кг.
Более высокая продуктивность и лучшая сохранность молодняка
свиней за период опыта позволили снизить себестоимость прироста живой массы в первой опытной группе, по сравнению со второй опытной и контрольной. В результате скармливания кормовой
добавки в опытных группах дополнительные затраты по первой
опытной группе составили 2,92 и по второй опытной группе – 5,85
рубля. Общие затраты на производство 1 кг свинины в первой
опытной группе составили 31,95 рублей, что на 7,96 и 15,66 рублей выше, чем во второй и контрольной группах. При одинаковой
цене реализации (2007 год) 1 кг прироста – 42,87 рублей, прибыль
в первой опытной группе составила 10,92 рубля, что выше, чем
во второй опытной и контрольной соответственно на 7,96 и 15,66
рублей. В контрольной группе убыток от реализации 1 кг свинины
составил 4,74 рубля. Экономическая эффективность ветеринарных
мероприятий на рубль затрат в первой опытной группе составил
48,50 рублей, а во второй опытной – 23,20 рублей.
111
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Таким образом, экономическая эффективность ветеринарных
мероприятий на рубль затрат при скармливании кормовой добавки
«БиоХит» из личинок трутней и подмора пчёл в количестве 0,5
мл на 1 кг живой массы молодняку за подсосный период составил
48,50 рублей.
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
ПРОИЗВОДСТВУ
Материалы исследований вошли в методические рекомендации для практикующих ветеринарных специалистов «Биология, диагностика и профилактика балантидиоза» (2009); получены
2 патента на изобретение: патент РФ на изобретение № 2346457
от 20.02.2009 «Кормовая добавка из личинок трутней и подмора
пчел» и патент РФ на изобретение №2446812 0т 10 апреля 2012 г.
«Порошок из личинок трутней для повышения резистентности организма животных и порошок на его основе для лечения балантидиоза и сальмонеллеза».
По результатам исследований можно рекомендовать:
1. Для профилактики балантидиоза у поросят использовать
лиофилизированный препарат из преимагинальных фаз
трутней с кормом, разведенного 1 : 10 дистиллированной водой, в дозе 1мл/кг массы тела в течение 30 дней (с 15 по 45
сутки) один раз в сутки.
2. Для лечения поросят больных балантидиозом в ассоциации
с пастереллезом и сальмонеллезом скармливать порошок из
личинок трутней, тилозина и диметридазола в дозе 1г/кг живой массы тела в течение 12 дней.
3. Для профилактики балантидиоза свиней выпаивать поросятам в подсосный период с питьевой водой кормовую добавку
«БиоХит» из личинок трутней и подмора пчел в дозе 0,5 мл/
кг живой массы в течение 30 суток.
112
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
Библиографический список
1. Авакян, А. А. Атлас анатомии простейших, патогенных
для человека и животных / А. А. Авакян. – М. : Медицина,
1975. –312 с.
2. Агринский, Н. И. Диагностика балантидиоза / Н. И. Агринский // Ветеринарная лабораторная практика. – 1963. – Т. 2. –
С. 278–280.
3. Акбаев, М. Ш. Паразитология и инвазионные болезни животных / М.Ш. Акбаев, А.А. Водянов, Н.Е. Косминков и др. –
М. : КолосС, 2002. – 743 с.
4. Амбуладзе, К. И. Паразитология и инвазионные болезни с.-х.
животных / К. И. Амбуладзе. – М. : Агропромиздат, 1975. –
471 с.
5. Амбуладзе, К. И. Паразитология и инвазионные болезни с.-х.
животных / К. И. Амбуладзе. – М. : Агропромиздат, 1990. –
464 с.
6. Апанасов, Р. Н. Балантидии человека, диких и домашних животных в Казахстане / Р. Н. Апанасов // Тр. Ин-та зоологии
АН КазССР. Т. IX, 1958. – С. 198–202.
7. Апанасов, Р. Н. Некоторые данные по эпизоотологии балантидиоза свиней в Казахстане / Р. Н. Апанасов // Ветеринария. – 1964. – № 9. – С. 60–61.
8. Апанасов, Р. Н. К вопросу терапии балантидиоза свиней /
Р. Н. Апанасов // Сборник работ научной конференции по
протозоологическим проблемам, посвященный 90-летию
со дня рождения проф. В. Л. Якимова. – Ленинград, 1969. –
С. 228–231.
9. Апанасов, Р. Н. Балантидиозная дизентерия (балантидиоз)
свиней / Р. Н. Апанасов // Болезни свиней (кишечные протозойные). – Алма-Ата : Кайнар, 1980. – С. 18–70.
10. Ахматов, Д. А. Способ оздоровления свиноферм от балантидиоза свиней / Д. А. Ахматов // Вестник ветеринарии. –
Ставрополь, 2000. – № 2. – С. 34.
11. Баканов, В. Н. Кормление сельскохозяйственных животных / В. Н. Баканов, В. К. Менькин. – М. : Агропромиздат,
1989. –511 с.
12. Балаховский, И. С. Руководство по клинической лабораторной диагностике / И. С. Балаховский. – М. : Медицина,
1982. – С. 166–201.
113
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
13. Бобчук, Е. В. Возбудитель болезни балантидиоза свиней,
патогенез и меры борьбы с ним / Е. В. Бобчук // Болезни
сельскохозяйственных животных и меры борьбы с ними на
Дальнем Востоке и в Забайкалье. – Благовещенск : Изд-во
ДальГАУ, 1996. – С. 75–80.
14. Бобчук, Е. В. Влияние балантидиозной инвазии на формирование иммунитета против сальмонеллеза у свиней : автореф.
дис. ... канд. вет. наук / Е. В. Бобчук ; Дальневост. гос. аграрный ун-т. – Благовещенск, 2000. – 21 с.
15. Бобчук, Е. В. Противосальмонеллезные агглютинины и циркулирующие иммунные комплексы у поросят инвазированных балантидиями / Е. В. Бобчук // Проблемы зоотехнии,
ветеринарии и биологии с.-х. животных в Приамурье. – Благовещенск, 2003. – С. 56–60.
16. Богданов, Г. А. Кормление сельскохозяйственных животных : учебник / Г. А. Богданов. – М. : ВО Агропромиздат,
1990. – 624 с.
17. Богданович, В. В. Изменение патогенности балантидиев в
связи с воздействием на организм хозяина сопутствующей
глистной инвазии : автореф. докт. дис. / В. В. Богданович. –
Киев, 1964.
18. Богданович, В. В. Об идентичности инфузорий рода
Balantidium от различных хозяев / В. В. Богданович // Успехи
протозоологии. – Л. : Наука, 1969. – С. 268–269.
19. Боль, К. Г. К основам патологической анатомии сельскохозяйственных животных / К. Г. Боль, Б. К. Боль. – М.,
1961. –505 с.
20. Бонка, П. В. К балантидийной инвазии свиней в Узбекистане / П. В. Бонка, И. Х. Иргашев // Науч. тр. Самаркандского
с.-х. ин-та, Т. 24, 1972. С. 122–125.
21. Бонка, П. В. Возрастная и сезонная динамика балантидиозной инвазии свиней в условиях свинохозяйств поливной
зоны Самаркандской области / П. В. Бонка, И. Х. Иргашев //
Тезисы доклада 32-й науч. конф. Самаркандского с.-х. ин-та,
1972. С. 52.
22. Бонка, П. В. Некоторые вопросы белкового обмена при балантидиозе свиней / П. В. Бонка // Науч. тр. Самаркандского
с.-х. ин-та, Т. 26, 1972. – С. 61–63.
114
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
23. Бонка, П. В. Фуразолидон при балантидиозе свиней /
П. В. Бонка, К. Физанов // Ветеринария. – 1974. – № 2. –
С. 76–77.
24. Бонка, П. В. Влияние экстремальных условий Узбекистана на
развитие и распространение балантидий у свиней / П. В. Бонка // Кишечные простейшие, Вильнюс, 1982.– С. 22–30.
25. Бонка, П. В. Балантидиоз свиней (эпизоотология, патогенез
и профилактика) : автореф. канд. дис. / П. В. Бонка. – Самарканд, 1985. – 18 с.
26. Бочкарев, В. Н. Коррекция иммунодефицита при
трихоцефалезно-балантидиозной инвазии / В. Н. Бочкарев //
Сборник научных трудов Санкт-Петербургского ветеринарного ин-та. – СПб., 1993. – С. 25–29.
27. Васильева, Е. А. Клиническая биохимия сельскохозяйственных животных / Е. А. Васильева. – М. : Россельхозиздат,
1974. – 192 с.
28. Васильева, В. А. Смешанные инвазии свиней, вызываемые простейшими и гельминтами / В. А. Васильева // Возрастная морфофизиология и профилактика болезней животных в с.-х. предприятиях различного типа. – М., 1994 –
С. 134–136.
29. Викторов, П. И. Методика и организация зоотехнических
опытов // П. И. Викторов, В. К. Менькин. – М. : ВО «Агропромиздат», 1991. – 112 с.
30. Вишняков, С. И. Патология белкового обмена у с/х животных / С. И. Вишняков. – М. : Медгиз, 1983. – 58 с.
31. Восканян, К. М. Исследования по балантидиозу в Армянской ССР : автореф. канд. дис. / К. М. Восканян. – Ереван,
1970. – 24 с.
32. Гамко, Л. Н. Основы научных исследований в животноводстве / Л. Н. Гамко, И. В. Малявко. – Брянск : Изд-во БГСХА,
1998. – 127 с.
33. Гевлич, О. А. Балантидиоз свиней (анализ эпизоотической
ситуации, гематологические, иммунологические и биохимические исследования при профилактике) : дис. ... канд. наук /
О.А. Гевлич. – Ставрополь, 2009. – 112 с.
34. Георгиевский, В. И. Минеральное питание животных /
В. И. Георгиевский, В. Н. Анненков, В. Т. Самохин. – М. :
Колос, 1979. – 471 с.
115
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
35. Гинецинская, Т. А. Частная паразитология / Т. А. Гинецинская, А.А. Добровольский // Паразитические простейшие и
плоские черви. – М. : Высшая школа, 1978. – С. 303.
36. Гончаров, С. К. Балантидии как компоненты кишечного паразитоценоза и их роль в этиологии энтероколитов у поросят / С. К. Гончаров // X конференция Украинского общества
паразитологов 4.2. – Киев : Наукова думка, 1986. – С. 148.
37. Гончаров, С. К. Энтероколиты свиней балантидиозной и
сальмонелл езной этиологии / С. К. Гончаров // Современные проблемы профилактики зоонозных болезней и пути их
решения. – Минск, 1987. – С. 187.
38. Городецкий, А. А. Витаминное питание свиней / А. А. Городецкий. – М. : Колос, 1983.– С. 24–76.
39. Градусов, Ю. Н. Аминокислотное питание свиней / Ю. Н. Градусов. – М. : Колос, 1968. – 320 с.
40. Даштаянц, Г. А. Клиническая гематология / Г. А. Даштаянц. –
Киев : Здоровье, 1978.
41. Двинская, Л. М. Витаминное питание сельскохозяйственных
животных : рекомендации / Л. М. Двинская. – М. : Агропромиздат, 1989. – 56 с.
42. Джупина, С. И. Методы эпизоотологического исследования
и теория эпизоотического процесса / С. И. Джупина. – Новосибирск : Наука, Сиб. отд-ние, 1991. – 142 с.
43. Джупина, С. И. Контроль эпизоотического процесса /
С. И. Джупина ; РАСХН. Сиб. отд-ние ИЭВС и ДВ. – Новосибирск, 1994. – 164 с.
44. Димов, С. К. Эпизоотический процесс и противоэпизоотическая система : сб. науч. тр. / С. К. Димов // Актуальные проблемы ветеринарной медицины в России. – Новосибирск,
1998. – С. 290–296.
45. Дмитриев, А. Ф. Оценка профилактических и противоэпизоотических мероприятий на животноводческих фермах /
А. Ф. Дмитриев. – Ставрополь : АГРУС, 2006. – 44 с.
46. Дмитроченко, А. П. Потребность сельскохозяйственных животных в микроэлементах и её определение / А. П. Дмитроченко. – М., 1962. – С. 118–121.
47. Догель, В. А. Общая протозоология / В. А. Догель, Ю. И. Полянский, Е. М. Хейсин. – М. : АН СССРД935. – 592 с.
116
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
48. Дымко, Е. Ф. Клиническая биохимия в ветеринарии : метод.
пособие / Е. Ф. Дымко, З. К. Кожебеков. 1986. – 208 с.
49. Жордания, Т. К. Некоторые цитохимические особенности
балантидиев человека и свиней / Т. К. Жордания // Успехи
протозоологии. – Л., 1969. – С. 26–27.
50. Жуленко, В. Н. Ветеринарная токсикология / В. Н. Жуленко,
М. И. Рабинович, Г. А. Таланов. – М. : Колос, 2001. – 383 с.
51. Жумакаева, А. Н. Балантидиоз в ассоциации с некоторыми
кишечными нематодозами свиней и меры борьбы с ними
(Смешанное заболевание, обусловленное балантидиями,
аскаридами, трихоцефалюсами, эзофогостомами) : автореф.
канд. дис. / Жумакаева А. Н. – М., 1986. – 15 с.
52. Жумакаева, А. Н. Ассоциативные паразитарные болезни
свиней / А. Н. Жумакаева // Ветеринария. – 1986. – № 7. –
С. 53–54.
53. Жумакаева, А. Н. Испытание МИКС-10, родовет субстанса,
панакура и морантел-тартрата при ассоциативных болезнях
поросят / А. Н. Жумакаева // Труды Целиноградского с.-х.
ин-та. – Т. 68, 1986. – С. 37–41.
54. 3аблоцкий, В. Т. Современное состояние и перспективы исследований по разработке мер борьбы и профилактики протозойных болезней животных / В. Т. Заблоцкий // Вестник
ветеринарии. – Ставрополь, 2002. – № 3. – С. 11–15.
55. Засухин, Д. Н. Методы лабораторной диагностики протозойных болезней / Д. Н. Засухин // Клиника. Патология, диагностика и лечение инфекционных и инвазионных болезней.
Антибиотики. – Медицина, 1964. – С. 325–332.
56. 3ападнюк, И. П. Лабораторные животные, их разведение, содержание и использование в эксперименте / И. П. Западнюк,
В. И. Западнюк, Е. А. Захария. – Государсвенное медицинское изд-во УССР. – Киев, 1962.– С. 250–276.
57. Зенухина, Н. З. Ветеринарно-санитарные мероприятия на
пасеках / Н. З. Зенухина // Пчеловодство. – 2002.– № 7.–
С. 27–30.
58. Зерчаников, Л. К. Протозойные болезни и гельминтозы населения Урала / Л. К. Зерчаников. – М. : Медгиз, 1961. –
36 с.
59. Злыднев, Н. З. Кормление сельскохозяйственных животных
на Ставрополье / Н. З. Злыднев, В. И. Трухачев, А. И. Подколзин. – Ставрополь, 2000. – 164 с.
117
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
60. Злыднев, Н. З. Кормление сельскохозяйственных животных
на Ставрополье / Н. З. Злыднев, В. И. Трухачев, А. И. Подколзин. – Ставрополь, 2003. – 162 с.
61. Иванова, П. С. Культивирование балантидий свиней /
П. С. Иванова // Сб. работ Воронежского НИВОС, 940. –
Т. II. – С. 106–114.
62. Иванова, П. С. Балантидиоз свиней : автореф. док. дис. / Иванова П. С. ; Ивановский СХИ. – Иваново, 1948. – 36 с.
63. Иванова, П. С. Балантидиоз свиней / П. С. Иванова // Сб. научн. работ Ивановского с.-х. ин-та. – 1956. – Т. 3. – С. 22–28.
64. Иванова, П. С. Протозойные энтероколиты поросят, их течение и меры борьбы / П. С. Иванова // Болезни свиней. – Тарту, 1960. – С. 22–25.
65. Инфекционные болезни животных / Б. Ф. Бессарабов,
А. А. Ватутин, Е. С. Воронин и др. ; под ред. А. А. Сидорчука. – М. : КолосС, 2007. – 671 с.
66. Кальницкий, Б. Д. Минеральные вещества в кормлении животных / Б. Д. Кальницкий. – М. : Агропромиздат, 1985. –
207 с.
67. Караулов, А. В. Клиническая иммунология / под ред. А. В. Караулова. – М. : Мед. информ. агентство, 1999. – 604 с.
68. Карпенко, И. Г. К эпизоотологии балантидиоза свиней /
И. Г. Карпенко // Ветеринария. – 1969. – № 3. – С. 32–34.
69. Карпенко, И. Г. Лечение свиней при балантидиозе / И. Г. Карпенко, А. Н. Перепечаев // Ветеринария. – 1969. – № 5. –
С. 31–32.
70. Карпенко, И. Г. Борьба с балантидиозом свиней / И. Г. Карпенко // Ветеринария. – 1970. – № 3. – С. 69–70.
71. Карпенко, И. Г. Эпизоотология балантидиоза свиней и разработка мер борьбы с этим заболеванием в хозяйствах Ростовской области : автореф. канд. дис. / Карпенко И. Г. – М.,
1972. – 20 с.
72. Карпенко, И. Г. Балантидиоз свиней / И. Г. Карпенко. – М. :
Россельхозиздат, 1974. – 65 с.
73. Кизин, Е. К. Особенность эпизоотологии основных сочленов
паразитоценоза свиней на крупных промышленных свинокомбинатах юга Западной Сибири / Е. К. Кизин // Вест. Ом.
гос. аграрн. ун-та. – 2003. – № 2. – С. 63–67.
118
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
74. Кондрахин, И. П. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии : справочное пособие / И. П. Кондрахин,
Н. В. Курилов, А. Г. Малахов. – М. : Агропромиздат, 1985. –
287 с.
75. Кондрахин, И. П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики : справочник / И. П. Кондрахин,
А. В. Архипов, В. И. Левченко и др. – М. : КолосС, 2004.
76. Конопаткин, А. А. Эпизоотология и инфекционные болезни
сельскохозяйственных животных / А. А. Конопаткин, И. А. Бакулов, Я. В. Нуйкин и др. – М. : Колос, 1984. – 544 с.
77. Корнилова, О. А. О патогенной роли инфузории Balantidium
coli / О. А. Корнилова // Функциональная морфология, экология и жизненные циклы животных. – СПб., 2004. – Вып. 4. –
С. 69–71.
78. Кост, Е. А. Руководство по клиническим лабораторным исследованиям / Е. А. Кост, Л. Г. Смирнова ; под ред. Е. А. Кост
и Л. Г. Смирновой. – М. : Медицина, 1964.
79. Куна, Т. Кормление свиней / Т. Куна. – Сельхозгиз, 1961.
80. Лазарян, Д. С. Химико-технологическое исследование гомогената трутневых личинок / Д. С. Лазарян // Актуальные
проблемы создания новых лекарственных препаратов природного происхождения, III Международный съезд, СанктПетербург – Пушкин, 29 июня – 1 июля. – 1999. – 277 с.
81. Лапшин, С. А. Новое в минеральном питании сельскохозяйственных животных / С. А. Лапшин, Б. Д. Кальницкий и
др. – М. : Росагропромиздат, 1988. – 207 с.
82. Лебедев, В. И. Приготовление гомогената личинок трутней /
В. И. Лебедев, М. А. Легович // Пчеловодство. – 2003. –
№ 3. – С. 52–54.
83. Лебедев В. И. Заготовка личинок трутней / В. И. Лебедев,
М. А. Легович ; НИИ пчеловодства // Пчеловодство. – 2003. –
№ 3. – С. 55–57.
84. Макаров, В. В. Эпизоотологическая методология : лекционный курс / В. В. Макаров. – М., 2001. – 224 с.
85. Макарцев, Н. Г. Кормление сельскохозяйственных животных / Н. Г. Макарцев. – К. : ГУП «Облиздат», 1999. – 646 с.
86. Макарцев, Н. Г. Кормление сельскохозяйственных животных / Н. Г. Макарцев. – Калуга : Изд-во научной литературы
Н. Ф. Бочкаревой, 2007. – 608 с.
119
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
87. Малов, Д. Н. Гематологические и патологические изменения
при балантидиозе / Д. Н. Малов, Н. Ф. Фирсов // Проблемы
развития аграрного сектора экономики и пути их решения. –
Персиановка, 2003. – С. 256.
88. Малов, Д. Н. Ассоциативное проявление балантидиоза и
эшерихиоза свиней: меры борьбы : автореф. дис. ... канд. вет.
наук / Малов Д. Н. – Н. Новгород, 2004. – 20 с.
89. Малов, Д. Н. Распространение, клинические и патоморфологические признаки у поросят при смешанной инвазии балантидиоз – колибактериоз / Д. Н. Малов // Теория и практика
борьбы с паразитарными болезнями. – М., 2004. – Вып. 5. –
С. 238–240.
90. Малов, Д. Н. Естественная резистентность поросят при
балантидиозно-колибактериозной ассоциации / Д. Н. Малов // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. – М., 2004. – Вып. 5. – С. 235–237.
91. Малов, Д. Н. Эпизоотическая ситуация, клинические, патоморфологические признаки при ассоциации балантидиоз – колибактериоз / Д. Н. Малов // Материалы научной
конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными
болезнями». – М. : ВИГИС, 2004. – С. 201.
92. Малов, Д. Н. Терапевтическая эффективность препаратов
сульф гранулы и метронидазола (25 %) / Д. Н. Малов // Материалы научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». – М. : ВИГИС, 2004. – С. 203–204.
93. Манжос, А. Ф. Биологические особенности и практическая
значимость балантидиев в патологии молодняка свиней на
Украине / А. Ф. Манжос, В. С. Сумцов, Н. М. Лапшин // Кишечные простейшие. – Вильнюс, 1982. – С. 83–86.
94. Манжос, А. Ф. Балантидиоз свиней // Протозойные болезни сельскохозяйственных животных / А. Ф. Малов. – М. :
1982. – С. 324–331.
95. Манжос, А. Ф. Диагностика балантидиоза свиней / А. Ф. Манжос, В. С. Сумцов // Ветеринария. – 1982. – № 3. – С. 43–44.
96. Манжос, А. Ф. Балантидиоз свиней и современные методы
борьбы с ним / А. Ф. Манжос // Ветеринария. – 1983. – № 6.–
С. 37–40.
97. Марынич, О. А. Нозологический профиль паразитарной и
инфекционной патологии свиней и место балантидиоза в
120
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
98.
99.
100.
101.
102.
103.
104.
105.
106.
107.
108.
109.
нём / О. А. Марынич, С. Н. Луцук, И. К. Тутов // Актуальные
проблемы повышения продуктивности и охраны здоровья
животных : сборник научных статей. – Ставрополь : АГРУС,
2006. – С. 326–328.
Марынич, О. А. Мониторинг балантидиоза свиней в Ставропольском крае / О. А. Марынич, С. Н. Луцук // Управление функциональными системами организма. – Ставрополь :
АГРУС, 2006. – С. 199–203.
Марынич, О. А. Дифференциальная диагностика балантидиоза свиней и некоторых других протозойных, бактериальных
и вирусных инфекций / О. А. Марынич // Вестник ветеринарии. – Ставрополь, 2006. – № 3. – С. 36–39.
Машенков, О. Н. Живительная сила «пчелиного хлеба» /
О. Н. Машенков // Пчеловодство. – М., 2003. – № 1. –
С. 55–56.
Машенков, О. Н. Трутневой расплод – лечебное средство /
О. Н. Машенков // Пчеловодство. – М., 2005. – № 8. – С. 60–61.
Мозгов, И. Е. Фармакология : руководство для ветеринарных
врачей / И. Е. Мозгов. – 3-е изд., перераб. и доп. – М. : Сельхозгиз, 1961.– 581 с.
Москвичева, Н. В. Динамика белков и белковых фракций
в сыворотке крови растущих поросят / Н. В. Москвичева //
Труды МВА. – М., 1960. – Т. 30. – Вып. 119. – С. 23–25.
Моусгард, Д. Потребность растущих свиней в витаминах
группы В / Д. Моусгард // Материалы VI Международного
конгресса по животноводству. – М., 1957. – С. 44–57.
Науменков, А. И. Витаминное питание сельскохозяйственных животных / А. И. Науменков. – М. : Колос, 1973. –
С. 114–117.
Немцов, С. В. Хитозан из подмора – новый продукт пчел /
С. В. Немцов, О. Ю. Зуева, Р. Г. Хисматуллин и др. // Пчеловодство. – М., 2001. – № 5. – С. 50–51.
Неринг, К. Международный вестник сельскохозяйственной
науки / К. Неринг. – 1961. – № 5.
Новак, Д. Д. Руководство по общей эпизоотологии : справочная книга / Д. Д. Новак. – Новосибирск, 1998. – 415 с.
Ноздрин, Г. А. Биологически активные вещества и перспективы их применения в ветеринарии / Г. А. Ноздрин, И. В. Наумкин. – Новосибирск, 1992. – 34 с.
121
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
110. Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных :
справочное пособие / под ред. А. П. Калашникова, В. И. Фисинина, В. В. Щеглова, Н. И. Клейменова. – М., 2003. – 456 с.
111. Ойвин, И. А. Статистическая обработка результатов экспериментальных исследований / И. А. Ойвин // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. – М., 1960. –
№ 4. – С. 76–85.
112. Основы биотехнологии ветеринарных препаратов : учебное пособие для студентов высших учебных заведений по
специальности 310800 – Ветеринария / сост. И. К. Тутов,
В. И. Ситько. – Ставрополь, 1997. – С. 253.
113. Пальчиков, Д. А. Балантидиоз на Сахалине / Д. А. Пальчиков // Земля сибирская дальневосточная. – 1980. – № 10. –
С. 42–43.
114. Пауликас, В. Ю. Микрофлора кишечника и энтеропаразитарная патология / В. Ю. Пауликас, Л. К. Грубляускас, Г. В. Вайкуте, В. И. Шаркунас // Научные достижения микробиологов – нар. хозяйству. – Вильнюс, 1988. – Ч. 2.– С. 154–156.
115. Пауликас, В. К. Паразитоценоз желудочно-кишечного тракта свиней / В. К. Пауликас. – М. : Агропромиздат, 1990. –
С. 56–59.
116. Петелин, А. А. Успешная и безопасная борьба с грызунами /
А. А. Петелин // Зоондустрия. – 2000. – № 10. – С. 83.
117. Плаксин, В. И. Патоморфология и некоторые вопросы патогенеза балантидиоза свиней : автореф. канд. дис. / Плаксин В. И. – Витебск, 1968. – 29 с.
118. Плященко, С. И. Естественная резистентность организма
животных при воздействии различных факторов внешней
среды / С. И. Плященко, В. Т. Сидоров, В. Т. Хацкевич // С.-х.
биология. – 1976. – Т. 11. – № 5. – С. 658–753.
119. Плященко, С. И. Определение естественной резистентности организма с.-х. животных : методические указания /
С. И. Плященко, Г. К. Волков, В. Т. Сидоров. – Минск, 1985. –
34 с.
120. Плященко, С. И. Повышение естественной резистентности
организма животных – основа профилактики болезней /
С. И. Плященко // Ветеринария. – 1991. – № 6. – С. 49–52.
121. Постников, В. С. Исследования крови у животных и их клиническое толкование / В. С. Постников. – М. : МВА, 1978.
122
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
122. Прохода, И. А. Трутневые личинки – ценный белковый продукт / И. А. Прохода // Пчеловодство. – М., 2006. – № 10. –
С. 50–51.
123. Прохода, И. А. Трутневые личинки в косметической промышленности / И. А. Прохода // Пчеловодство. – М., 2006. –
№ 1. – С. 56–57.
124. Прохорова, М. И. Методы биохимических исследований (липидный и энергетический обмен) / М. И. Прохорова // Уч.
пособие. – Ленинград, 1982. – С. 211.
125. Ридала, В. Важнейшие паразиты свиней в Эстонской ССР /
В. Ридала // Болезни свиней. – Тарту, 1960. – С. 29–31.
126. Ридала, В. О балантидиозе свиней и борьбе с этим заболеванием / В. Ридала // Ветеринария. – 1967. – № 6 – С. 62–63.
127. Ридала, В. Балантидиоз свиней / В. Ридала // Сборник работ
научной конференции по протозоологическим проблемам,
посвященный 90-летию со дня рождения проф. В. Л. Якимова. – Л., 1967. – С. 275–277.
128. Ридала, В. О борьбе с паразитами кишечника свиней Эстонской ССР / В. Ридала // Сб. научн. тр. Эстонской с.-х. академии. – 1970. – Т. 70. – С. 55–57.
129. Рось, И. Ф. Биологические основы витаминного кормления
свиней / И. Ф. Рось. – Киев : Колос, 1969. – С. 84–127.
130. Рочкене, А. Некоторые биологические особенности балантидиев / А. Рочкене // Кишечные простейшие. – Вильнюс,
1982. – С. 116–120.
131. Рядчиков, В. Г. Аминокислотное питание свиней / В. Г. Рядчиков // Сборник научных трудов. – М., 1963. – С. 72–75.
132. Савченко, В. Ф. Патогенное влияние балантидий на организм
свиней и их лечение при балантидиозе : автореф. дис. ... канд.
вет. наук / Савченко В. Ф. – Витебск, 1969. – 17 с.
133. Савченко, В. Ф. Морфологические и биохимические изменения крови при балантидиозе свиней / В. Ф. Савченко // Ветеринария. – 1969. – № 1. – С. 51–52.
134. Савченко, В. Ф. Балантидиоз свиней / В. Ф. Савченко // Сельское хозяйство Белоруссии. – 1969. – № 2.
135. Савченко, В. Ф. Патологоанатомические и гистологические
изменения у поросят при балантидиозе / В. Ф. Савченко,
И. М. Карпуть // Вопросы ветеринарии и зоотехнии. –
Минск, 1969.
123
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
136. Савченко, В. Ф. Ферментативные показатели кала при балантидиозе свиней / В. Ф. Савченко, Ю. И. Никитин // Вопросы
ветеринарии и зоотехнии. – Минск, 1969.
137. Савченко, В. Ф. Иммуноморфологические реакции в кровеносных органах свиней при балантидиозе / В. Ф. Савченко,
И. М. Карпуть // Известия Академии наук БССР. – Минск,
1969.
138. Савченко, В. Ф. Изменение некоторых морфологических
и биохимических показателей в крови при балантидиозе
свиней / В. Ф. Савченко // Известия Академии наук БССР. –
Минск, 1969.
139. Савченко, В. Ф. Гистологические и некоторые биохимические изменения у свиней при балантидиозе / В. Ф. Савченко,
А. И. Федоров, И. М. Карпуть // Вопросы теории и практики
ветеринарии и зоотехнии. – Минск, 1970.
140. Сафиуллин, Р. Т. Эймериоз и балантидиоз в свиноводческих
хозяйствах Пермской области / Р. Т. Сафиуллин // Вестник Ветеринарии. – Ставрополь : Энтропос, 2002. – № 3.– С. 63–64.
141. Серых, М. М. Общая и экологическая иммунология /
М. М. Серых, О. Н. Макурина, А. М. Петров и др. – Самара :
Самарский ун-т, 2000. – С. 174.
142. Сидоркин, В. А. Перспективы борьбы с дизентерией и балантидиозом свиней / В. А. Сидоркин // Материалы Всерос.
науч.-практ. конф. «Ветеринария. Современные аспекты и
перспективы». – Орел, 2002. – С. 34–36.
143. Симонов, А. Н. Организация ветеринарного дела: методические указания / А. Н. Симонов, А. Н. Кононов. – Ставрополь : АГРУС, 2007.– 24 с.
144. Силин, Ю. С. Краткая характеристика балантидиоза свиней
и его распространенность / Ю. С. Силин // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных
животных : сб. науч. тр. по материалам 73-й науч.-практ.
конф. (23–25 февраля 2009 г.). – Ставрополь : АГРУС, 2009. –
С. 90–92.
145. Силин, Ю. С. Балантидиоз свиней / Ю. С. Силин // Паразитарные, инфекционные и неинфекционные заболевания животных : сб. науч. тр. по материалам Международной науч.практ. Интернет-конф. (1–15 декабря 2008 г.) / Ставропольский гос. ун-т. – Ставрополь : АГРУС, 2009. – С. 86–88.
124
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
146. Силин, Ю. С. Биология, диагностика и профилактика балантидиоза свиней : рекомендации / Ю. С. Силин, С. Н. Луцук,
О. А. Гевлич ; Ставропольский гос. аграрный ун-т. – Ставрополь : АГРУС, 2009. – 20 с.
147. Силин, Ю. С. Лечебная и профилактическая эффективность
биологически активного препарата из преимагинальных фаз
трутней при балантидиозе свиней / Ю. С. Силин, С. Н. Луцук, Ю. В. Дьяченко // Ветеринария Кубани. – 2011. – № 2. –
С. 10–12.
148. Смирнов, А. М. Клиническая диагностика внутренних незаразных болезней животных / А. М. Смирнов, П. Я. Конопелько, А. П. Пушкарев и др. – М. : ВО Агропромиздат,
1988. – 511 с.
149. Смирнова, В. В. Живительная сила пчелиного подмора /
В. В. Смирнова // Пчеловодство. – М., 2007. – № 4.– С. 54–57.
150. Смирнова, В. В. Продукты пчеловодства – оптимальный
путь к активному долголетию / В. В. Смирнова // Пчеловодство. – М., 2006. – № 1. – С. 52–53.
151. Соболев, М. И. Влияние кормовых, возрастных и климатических факторов у свиней / М. И. Соболев // Труды Саратовского СХИ. – 1969. – Т. 25. – 123 с.
152. Соколов Е. И. Клиническая иммунология : руководство для
врачей / под ред. Е. И. Соколова. – М. : Медицина, 1998. –
272 с.
153. Степаненко, Б. Н. Химия и обмен углеводов // Материалы III
Всесоюзной конференции, 1985. – С. 321.
154. Субботин, В. В. Основные элементы профилактики желудочно-кишечной патологии новорожденных животных /
В. В. Субботин, М. Л. Сидоров // Ветеринария. – 2004. –
№ 1. – С. 3–6.
155. Счененович, В. Б. К вопросу о балантидиозе человека / В. Б. Счененович // Мед. паразитол. – 1949. – Т. 4. – С. 368–370.
156. Счененович, В. Б. Балантидиоз / В. Б. Счененович, В. Г. Хамцов // Руководство по микробиологии, клинике и эпидемиологии инфекционных болезней. – 1968. – Т. 9. – С. 197.
157. Тарасов, В. В. Простейшие патогенные для человека /
В. В. Тарасов. – М. : Изд-во МГУ, 1987. – 93 с.
158. Тимофеев, Б. А. Балантидиоз / Б. А. Тимофеев // Профилактика протозойных заболеваний сельскохозяйственных животных. – М. : Россельхозиздат, 1986. – С. 113–119.
125
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
159. Товмасян, Д. А. Патогенетическое влияние балантидий на
организм свиней / Д. А. Товмасян, П. В. Бонка // Ветеринария. – 1982. – № 9. – С. 47–48.
160. Трухачев, В. И. Корма и кормление сельскохозяйственных
животных / В. И. Трухачев, Н. З. Злыднев, А. И. Подколзин. –
Ставрополь, 2006. – 295 с.
161. Урбан, В. П. Практикум по эпизоотологии и инфекционным
болезням с ветеринарной санитарией / В. П. Урбан, М. А. Сафин, А. А. Сидорчук и др. – М. : Колос, 2002. – 216 с.
162. Фердман, Д. Л. Биохимия / Д. Л. Фердман. – М. : Высшая
школа, 1966. – 183 с.
163. Чернуха, В. К. Желудочно-кишечные паразитозы свиней
и особенности их течения в условиях свиноводческих хозяйств Харьковской области / В. К. Чернуха, В. И. Бырка,
В. И. Котляр, В. Я. Пономаренко, П. В. Люлин // Генофонд
пород животных и методы его использования. – Харьков,
1995. – С. 97.
164. Чернушенко, Е. Ф. Иммунологические исследования в клинике / Е. Ф. Чернушенко, Л. С. Когосова. – Киев : Здоров'я,
1978. – 158 с.
165. Чечеткин, А. В. Биохимия животных / А. В. Чечеткин,
И. Д. Головацкий, П. А. Калимов, В. И. Воронянский. – М. :
Высшая школа, 1982. – 511 с.
166. Финаев, И. П. Балантидиозная дизентерия свиней / И. П. Финаев, К. Я. Райт // Ветеринария. – 1962. – № 2. – С. 33–34.
167. Хаитов, Р. М. Экологическая иммунология / Р. М. Хаитов,
Б. В. Пинегин, Х. И. Истамов. – М. : Изд-во ВНИРО, 1995. –
219 с.
168. Хамцов, В. Г. Распространение балантидиоза (Обзор отечественной и зарубежной литературы за 110 лет, 1857–
1966 гг.) / В. Г. Хамцов // Мед. паразитол. – 1969. – Т. 38. –
№ 5. – С. 598–606.
169. Хохрин, С. Н. Кормление сельскохозяйственных животных /
С. Н. Хохрин. – М., 1969.
170. Хусаинов, В. Р. Выращивание и сохранность поросят в подсосный период / В. Р. Хусаинов // Вестник Ветеринарии. –
Ставрополь, 2005. – № 1. – С. 59–62.
171. Чечеткин, А. В. Биохимия животных / А. В. Чечеткин,
И. Д. Головацкий, П. А. Калимов, В. И. Воронянский. – М. :
Высшая школа, 1982. – 511 с.
126
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
172. Щербаков, Г. Г. Внутренние болезни животных / Г. Г. Щербаков, А. В. Коробов. – СПб. : Лань, 2002. – 736 с.
173. Якубовский, М. В. Паразитарные болезни свиней и их профилактика / М. В. Якубовский, А. И. Ятусевич. – Минск :
Изд-во Ураджай, 1987. – 115 с.
174. Ятусевич, А. И. Руководство по ветеринарной паразитологии / А. И. Ятусевич и др. – Минск, 2007. – 481 с.
175. Brogden R. N. Metronidazone in anaerobic infection:
Pharmacocinetics and Therapeutic Use / R. N. Brogden,
R. C. Heel. – 1978.
176. Crasemann E. Landwirtschaftliche Vortrage, N. 20, 1955.
177. Dzbenski T. Evaluation of sensitivity of some diagnostic methods
on the grounds of Immunity to Balantidium coli/– Bull. Inst .med
morsk. Gdansku, 1966, v. 17, N. 4, p. 479–483.
178. Ilyina A. V., Tikhonov, V. E., Albulov, A. I., Varlamov, V. P.
Enzymic preparation of acid-free-water-soluble chitosan. 2000,
Process Biochimistry, 35, No6, pp. 563–568.
179. Hindsbo O. Age-dependent occurrence of the intestinal ciliate
Balantidium coli in pigs at a Danish research farm / O. Hindsbo,
C,.V. Nielsen, J. Andreassen A. L. Willingharm, M. Berdixen,
M.A. Nielsen, N.O. Nielsen // Acta veter. scand.–2000.– Vol.41,
N° i._ p.79–83.
180. Hegner R.W. Specificity in the genus Balantidium based on size
and shape of body and macronucleus, with description of six
new. species. – Amer. J. Hyg., 1934, v. l9, p. 38–67.
181. Lamy L., Roux H. Remargues morfologiques, biologiques et
speciflques sur. les. Balantidium de culture. – Bull. Soc. Path.
Exp., 1950, t. 43, p. 422–427.
182. Levine N.D. The effects of food intake upon the dimensions of
Balantidium from swine in culture. – Amer. J. Hyg., 1940, v. 32,
p.81–87.
183. Marti O.G., Hale, O.M. Parasite transmission in confined hogs /
O.G. Marti, O.M. Hale // Vet. Parasitol..– USA, 1986.– Vol. 19. –
P. 301–314.
184. McDoald J.D. On Balantidium coli (Malmsten, and Balantidium
suis, with an account on their neuromotor apparatus.– Univ.Calif.
Publ.Zool., 1922, v. 20, N.10, p. 243–300.
185. Messserli W. Weitere untersuchunger uber Magendarm–Parasiten
des Rindes und des Schweiner // Schweiz. Arch. Tierheilk. 92.
1950. S. 72–74.
127
Copyright ОАО «ЦКБ «БИБКОМ» & ООО «Aгентство Kнига-Cервис»
186. Nakauchi K. Prevalence of Balantidium coli infection in different
sex and age croups of pigs in Japan / K. Nakauchi // J. veter. Med.
Sc-Japan, 1991. – Vol. 53. – 2 5. – P. 967–968.
187. Schumker E. Balantidium coli: host specificity and relation to
the diet of an experimental host. – Amer. J. Hyg., 1930, v. 12,
p. 341–356.
188. Sonneborn T. M. Ciliated Protozoa: cytogenetics, genetics and
evolution. – Ann. Rev. Microbiol., 1949, v. 3, p. 55–80.
189. Sonneborn T. M. Patterns of nucleo–cytoplasmic integration in
Paramecium. – Proc. 9 Int. Congr. Genet., publ. in «Karyologia»,
1954a, v. 6, suppl., p. 307–325.
190. Veterenary Pharmacolody & Therapeutics, 7–th Ed., 1995 /
Chemoterapy of parasitic diseases, p. 978.
191. Zaman V. An immobilization reaction against Balantidium coli. –
Trans. Roy. Soc. Trop. Med. Hyg., 1964, v. 58, p. 255–256.
Публикуется в авторской редакции
Главный редактор И. А. Погорелова
Заведующий издательским отделом А. В. Андреев
Техническое редактирование и верстка И. Н. Олейникова
Подписано в печать 26.03.2013. Формат 60x84 1/16. Бумага офсетная.
Печать офсетная. Гарнитура «Times». Усл. печ. л. 7,4. Тираж 300 экз. Заказ № 58.
Налоговая льгота – Общероссийский классификатор продукции ОК 005–93–953000.
Издательство СтГАУ «АГРУС», г. Ставрополь, ул. Пушкина, 15.
Тел/факс: (8562) 35-06-94. E-mail: agrus2007@mail. ru.
Отпечатано в типографии издательско-полиграфического комплекса СтГАУ «АГРУС»,
г. Ставрополь, ул. Пушкина, 15.
1/--страниц
Пожаловаться на содержимое документа