close

Вход

Забыли?

вход по аккаунту

?

Патент BY10456

код для вставкиСкачать
ОПИСАНИЕ
ИЗОБРЕТЕНИЯ
К ПАТЕНТУ
РЕСПУБЛИКА БЕЛАРУСЬ
(46) 2008.04.30
(12)
(51) МПК (2006)
НАЦИОНАЛЬНЫЙ ЦЕНТР
ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ
СОБСТВЕННОСТИ
(54)
G 01N 33/53
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ АНТИТЕЛ К ТКАНИ МОЗГА
КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
(21) Номер заявки: a 20040923
(22) 2004.10.08
(43) 2006.04.30
(71) Заявитель: Республиканское научноисследовательское дочернее унитарное предприятие "Институт экспериментальной ветеринарии имени
С.Н. Вышелесского" (BY)
(72) Авторы: Красочко Петр Альбинович; Бойчук Сергей Викторович;
Полещук Николай Николаевич; Капуцкий Федор Николаевич; Герт
Евгений Владимирович; Торгашов
Вадим Иванович; Зубец Олег Владимирович (BY)
BY 10456 C1 2008.04.30
BY (11) 10456
(13) C1
(19)
(73) Патентообладатель: Республиканское
научно-исследовательское дочернее
унитарное предприятие "Институт
экспериментальной ветеринарии имени С.Н. Вышелесского" (BY)
(56) Иммунологические методы. - М.: Медицина, 1987. - С. 9-19, 442-443.
Красочко П.А. и др. Международная
научно-практическая конференция "Современные вопросы патологии сельскохозяйственных животных". - Мн.,
2003. - С. 157-159.
RU 2145227 C1, 2000.
(57)
Способ получения антител к ткани мозга крупного рогатого скота, включающий иммунизацию мыши путем внутрибрюшинного введения антигена и адъюванта с последующим отбором у иммунизируемой мыши асцитической жидкости, отличающийся тем, что
иммунизацию проводят с интервалом в 7 дней путем 6-кратного введения в качестве антигена суспензии ткани мозга крупного рогатого скота с концентрацией белка 1 мг/мл, содержащей 20-25 мг/мл окисленной микрокристаллической целлюлозы, при этом
одновременно с последним введением антигена вводят 0,5 мл асцитической жидкости,
взятой от мыши с перевиваемой саркомой 180/TG, после чего через 10-12 дней отбирают
асцитическую жидкость у иммунизируемой мыши, центрифугируют 20 мин при
8000 об/мин и используют надосадочную жидкость в качестве источника антител.
Изобретение относится к ветеринарной иммунологии, в частности к способам гипериммунизации животных.
Известен способ получения моноспецифических антител путем гипериммунизации
животных-продуцентов антигеном внутрибрюшинно с дальнейшим заражением их асцитной карциномой и с последующим отделением и очисткой получаемых антител [1].
Однако недостатком данного способа является недостаточный иммунный ответ у животных-продуцентов на введение одних антигенов.
Известна способность некоторых веществ, называемых адъювантами, при совместном
с антигеном парентеральном введении стимулировать выработку иммунного ответа.
BY 10456 C1 2008.04.30
Наиболее близким к заявляемому является способ получения антител к тканям крупного рогатого скота, включающий иммунизацию мыши путем внутрибрюшинного введения антигена и адьюванта с последующим отбором у иммунизируемой мыши
асцитической жидкости [2].
Однако данный адъювант обладает рядом недостатков: вызывает нерассасывающиеся
инфильтраты, абсцессы и поражения периферической нервной системы.
Задачей настоящего изобретения является повышение эффективности способа получения антител против тканей мозга крупного рогатого скота.
Поставленная задача достигается тем, что в способе получения антител к ткани мозга
крупного рогатого скота, включающем иммунизацию мыши путем внутрибрюшинного
введения антигена и адьюванта с последующим отбором у иммунизируемой мыши асцитической жидкости, иммунизацию проводят с интервалом в 7 дней путем 6-кратного введения в качестве антигена суспензии ткани мозга крупного рогатого скота с
концентрацией белка 1 мг/мл, содержащей 20-25 мг/мл окисленной микрокристаллической целлюлозы, при этом одновременно с последним введением антигена вводят 0,5 мл
асцитической жидкости, взятой от мыши с прививаемой саркомой 180/TG, после чего через 10-12 дней отбирают асцитическую жидкость у иммунизируемой мыши, центрифугируют 20 мин при 8000 об/мин и используют надосадочную жидкость в качестве источника
антител.
Пример 1.
Суспензия окисленной целлюлозы представляет собой тонкодисперсный белый порошок с содержанием карбоксильных групп 2,0-5,0 %, карбонильных групп 1,5-1,7 %, альдегидных групп 0,1-0,2 %, связанного нитроэфирного азота ≤ 0,2 %, зольностью ≤ 0,2 %,
растворимостью в 0,1 N растворе щелочи до 100 %, растворимостью в воде при 20 °С до
10 %, температурой начала разложения от 165 °С.
Пример 2.
При получении сыворотки для проведения исследований сформированы 2 группы по
7 белых мышей в каждой. Животным опытной группы № 1 6-кратно внутрибрюшинно
вводили ткани мозга крупного рогатого скота в дозе 0,1 мл при концентрации белка в антигене 1 мг/мл с добавлением целлюлозы 20-25 мг/мл. Интервал между иммунизациями 7 дней. Одновременно с последним введением антигена вводят 0,5 мл асцитной жидкости,
взятой от мышей с перевиваемой саркомой TG 180. Через 10-12 дней у мышей отбирают
асцитную жидкость, центрифугируют 20 мин при 8000 об/мин и используют надосадочную жидкость как источник антител. В результате исследования уровня антител в асцитной жидкости в реакции агглютинации с суспензией тканей мозга титр антител составлял
1:16-1:32.
Животных второй опытной группы иммунизировали по вышеуказаной схеме, но антигеном без адьюванта. В результате исследований установлено, что титр антител к тканям
мозга крупного рогатого скота в асцитной жидкости, полученной от мышей после иммунизации чистым антигеном без целлюлозы в реакции агглютинации, составляет 1:2 - 1:4.
Источники информации:
1. Финогенов А.Ю., Лях Ю.Г. Получение иммунного асцита от белых мышей к токсинокомплексу АВ Clostridium difficile // Ветеринарная медицина Беларуси. - № 1. - 2004. С. 12-14.
2. Иммунологические методы / Под ред. А. Фримеля. - М.: Медицина, 1987. - С. 472.
Национальный центр интеллектуальной собственности.
220034, г. Минск, ул. Козлова, 20.
Документ
Категория
Без категории
Просмотров
0
Размер файла
69 Кб
Теги
патент, by10456
1/--страниц
Пожаловаться на содержимое документа